Вы можете открыть актуальную версию документа прямо сейчас.
Если вы являетесь пользователем интернет-версии системы ГАРАНТ, вы можете открыть этот документ прямо сейчас или запросить по Горячей линии в системе.
Приложение 5.6.
(Обязательное)
Бактериологический метод контроля эффективности работы парового стерилизатора (Извлечение из "Методических указаний по контролю работы паровых и воздушных стерилизаторов" 1991 г. (N 15/6-5 Минздрав СССР)
1. Бактериологический контроль работы стерилизаторов проводят после монтажа и ремонта аппаратуры, а также в процессе его эксплуатации (плановый - 2 раза в год и при получении неудовлетворительных результатов контроля).
Контроль эффективности работы стерилизаторов осуществляют бактериологическим методом, используя биотесты на основании гибели спор тест-культуры. Биотесты представляют собой флаконы из трубки стеклянной для лекарственных средств ФИ/1-5 нс 1 ТУ 64-0709-10-88 (инсулиновые флаконы) или чашечки из алюминиевой фольги (диск размером 14 мм с луночкой-вдавление от неоточенного края карандаша), содержащие высушенные споры тест-культуры Вас. stearothermophilus ВКМ В-718, помещенные в пакеты из упаковочной бумаги (ОСТ 42-21-2-85). Упаковочные тесты нумеруют и размещают в контрольные точки паровых стерилизаторов (5-10 тестов). По окончании стерилизации биотесты подвергают бактериологическому исследованию.
2. Штамм Вас. stearothermophilus ВКМ В-718 подвижная термофильная палочка, по Граму окрашивается положительно, культивируется при температуре 55 +- 1°С, исключающей развитие других широко распространенных микроорганизмов. Споры овальные, расположенные центрально. На мясопептонном бульоне (рН 7,3 +- 0,1) через 24 часа образует помутнение среды, на мясо-пептонном агаре (рН 7,3 +- 0,1) - слабо выпуклые колонии диаметром 2-4 мм с ровным краем. Штамм непатогенен для человека и животных. Штамм получен из Всесоюзной коллекции микроорганизмов института биохимии и физиологии микроорганизмов, хранится в музее культур НИИ профилактической токсикологии и дезинфекции (117246 г.Москва, Научный проезд, 18).
Приготовление биотеста
В ампулу с лиофилизированной культурой вносят 0,2 мл. стерильной водопроводной воды и оставляют в течение 30 минут при комнатной температуре.
Одну-две капли культуры засевают в 2 пробирки с бульоном (МПБ, Хоттингера, питательный сухой) с 0,5% глюкозы. Суточную культуру засевают на пробирки скошенного агара (Хоттингера, мясопептонный, сухой питательный). Для получения спор культуру, выращенную на твердой питательной среде, смывают 5 мл стерильной водопроводной воды и переносят во флаконы со скошенным картофельнопептонным агаром. Взвесь покачиванием флакона равномерно распределяют по поверхности среды, инкубируют при 55° в течение 10-12 суток в наклонном положении агаром вверх. Для создания достаточной влажности в термостат помещают открытые емкости с водой. На 7, 10 и 12 сутки культуру проверяют на интенсивность спорообразования. Достаточным количеством считают 80-90 % спор в поле зрения. Культуру смывают стерильной дистиллированной водой. В целях освобождения от вегетативных клеток суспензию прогревают на водяной бане при температуре 65-70° в течение 30 мин, центрифугируют трехкратно с частотой вращения 33, 33 с - 1 (2000 об/мин) по 15 минут, промывая осадок стерильной дистиллированной водой после каждого центрифугирования. Отмытые споры суспендируют в стерильной дистиллированой воде в соотношении 1 : 1 по объему. Суспензию спор хранят в холодильнике при температуре 4°С в стерильных пробирках, закрытых ватно-марлевыми пробками с резиновыми колпачками (срок хранения 2 года).
Чистоту культуры на всех этапах культивирования контролируют высевом на агаровые пластинки.
Для определения титра жизнеспособных спор 0,1 мл исходной суспензии
-7
десятикратно разводят до 10 стерильной дистиллированной водой, высевая
-5 -7
на 3 агаровые пластинки по 0,1 мл ориентировочно из 10 -10 ) (предел
разведения зависит от титра полученных спор). Посевы инкубируют в течение
48 часов, проводят подсчет выросших колоний. Титр жизнеспособных спор в
исходной суспензии определяют как среднее арифметическое число колоний с
учетом разведения исходной суспензии и объема пробы для посева.
Пример расчетов. Предположим, что при посеве на три чашки Петри с
-5
агаром суспензия в разведении 1:100000 (10 ), подсчитано 140, 110 и 134
-6
колонии. Аналогичные высевы из разведений 10 привели к образованию
-7
12 ,14 и 16 колоний; из 10 - 5, 3 и 7 колоний. Вычисляем общее число
колоний, а затем среднее количество колоний для каждого разведения 128,
14 и 5
Из расчета посевной дозы (0,1 мл на каждую чашку) вычисляем титр
жизнеспособных спор в 1 мл исходной суспензии с учетом разведения, далее
находим среднее арифметическое число колоний:
5 7
128 х 10 х 10 = 12 х 8 х 10
6 7
14 x 10 х 10 = 14,0 х 10
7 7
5 х 10 х 10 = 50,0 х 10 ;
Таким образом, титр исходной суспензии составит:
7 8
(12 х 8 + 14,0 + 50,0) х 10 : 3 = 2,5 10 спор в 1 мл.
Исходная суспензия должна содержать не менее
7 8 5 6
2,5 х 10 - 2,5 х 10 спор в 1 мл. Споры в количестве 5 х 10 - 5 х 10
вносят из исходной суспензии с помощью дозатора пипеточного (ТУ
64-1-3329-81) в 0,02 мл в носители (стерильные инсулиновые флакончики с
ватно-марлевой пробкой или чашечки из алюминиевой фольги, разложенные в
чашки Петри), подсушивают в термостате при 37° или в эксикаторе над
осушителем (силикагель, хлористый кальций) при комнатной температуре в
течение 24 часов. Для определения фактической обсемененности исследуют
не менее 3-х биотестов от каждой группы. Во флаконы (чашечки) вносят по
1,0 мл стерильной дистиллированной воды (чашечки из алюминиевой фольги,
отмывают в широкогорлых пробирках с бусами в 10 мл) и встряхивают в
течение 10 минут на аппарате для встряхивания жидкостей с последующим
высевом на 3 агаровые пластинки по 0,1 мл суспензии из трех
последовательных десятикратных разведений.
3. Определение устойчивости спор тест-культур к действию водяного
насыщенного пара под избыточным давлением проводят при температуре
120 +- 2°С.
Биотесты в упаковочной бумаге помещают в стерилизационной коробке в
камеру парового стерилизатора. После набора давления в водопаровой камере
2
0,11+0,01 МПа (1,1+0,1 кгс/см ) проводят продувку парового стерилизатора
(вытеснение воздуха паром из камеры парового стерилизатора) в течение 10
минут при открытом спускном кране и давлении в стерилизационной камере от
2
0,01 до 0,02 МПа (от 0,1 до 0,2 кгс/см ). После продувки доводят
давление пара в стерилизационной камере до 0,11 +- 0,01 МПа (1,1 +- 0,1
2
кгс/см ) температура 120+-2°С и через 5 минут (времени выживания спор
тест-культуры) с момента установления давления спускают пар. Для
уменьшения времени воздействия пара до и после экспозиции подъем давления
проводят максимум в течение 8 минут, спуск - в течение 3 минут.
Аналогичное исследование проводят в течение 15 минут времени выдержки (время гибели спор тест-культуры). Контроль температуры осуществляют максимальным термометром. По окончании времени выдержки биотесты вынимают из стерилизатора и проводят бактериологическое исследование.
Партию биотестов считают годными для использования, если показатели устойчивости спор тест-культуры соответствуют вышеописанным требованиям.
4. Для определения эффективности работы стерилизатора в обеззараженные биотесты и контрольный (без стерилизации) стерильно вносят по 5 мл питательной среды, инкубируют при 55 °С в течение 7 суток при ежедневном просмотре посевов, делая высевы на агаровые пластинки, из проросших емкостей. При использовании
Если вы являетесь пользователем интернет-версии системы ГАРАНТ, вы можете открыть этот документ прямо сейчас или запросить по Горячей линии в системе.