Методические указания МУК 4.1.2158-07 "Определение остаточных количеств антибиотиков тетрациклиновой группы и сульфаниламидных препаратов в продуктах животного происхождения методом иммуноферментного анализа" (утв. Главным государственным санитарным врачом РФ 18 января 2007 г.) (с изменениями и дополнениями)

4.1. Методы контроля. Химические факторы

Методические указания МУК 4.1.2158-07
"Определение остаточных количеств антибиотиков тетрациклиновой группы и сульфаниламидных препаратов в продуктах животного происхождения методом иммуноферментного анализа"
(утв. Главным государственным санитарным врачом РФ 18 января 2007 г.)

Дата введения: с момента утверждения

Введены впервые

1. Область применения

1.1. Настоящие методические указания устанавливают методы определения остаточных количеств антибиотиков тетрациклиновой группы и сульфаниламидных препаратов в пищевом сырье и пищевых продуктах животного происхождения (в мясе и мясопродуктах; в птице и птицепродуктах; в молоке и молочных продуктах) на основе твердофазного иммуноферментного анализа.

1.2. Методические указания предназначены для органов и учреждений Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, осуществляющих контроль качества и безопасности продовольственного сырья и пищевых продуктов, а также могут быть использованы для проведения производственного контроля другими испытательными лаборатория#, аккредитованных в порядке, установленном Правительством Российской Федерации. Методические указания не могут быть применены для арбитражных исследований.

2. Общие положения

2.1. Среди контаминантов продовольственного сырья и пищевых продуктов важное место занимают остатки антимикробных ветеринарных препаратов, используемых для лечения и профилактики инфекционных заболеваний животных и птицы, в том числе антибиотики тетрациклиновой группы и сульфаниламидные препараты. При их поступлении в организм человека могут возникать аллергические реакции, дисбиотические изменения микрофлоры кишечника, а также происходит формирование антибиотикоустойчивых форм микроорганизмов.

Для определения остаточных количеств антибиотиков в пищевых продуктах в настоящее время в основном применяют микробиологические методы, которые являются сравнительно простыми и дешевыми, однако, отличаются недостаточной специфичностью результатов.

2.2. Для скрининга пищевых продуктов на загрязненность антибактериальными препаратами, в том числе сульфаниламидами, целесообразно использовать методы иммунохимического анализа, обеспечивающие высокую специфичность и точность, при этом предпочтительнее применять методы твердофазного иммуноферментного анализа (далее - ИФА), которые являются высокочувствительными.

2.3. При определении методом ИФА в соответствии с настоящими Методическими указаниями антибиотиков тетрациклиновой группы предел обнаружения их составляет от 0,0015 мг/кг до 0,15 мг/кг в зависимости от вида продукта; для сульфаниламидных препаратов - от 0,002 мг/кг до 0,02 мг/кг в зависимости от вида продукта.

3. Отбор и подготовка проб

3.1. Отбор пищевых образцов для исследования осуществляется в соответствии с требованиями ГОСТ 7269-79 "Мясо", ГОСТ 7202.0-74 "Мясо птицы", ГОСТ 3622-68 "Молоко и молочные продукты".

3.2. Отобранные образцы продуктов герметично упаковывают в полиэтиленовые мешки, стеклянные банки с притертыми крышками, маркируют и нумеруют. Образцы доставляют в лабораторию для анализа сразу же после отбора проб. В случае необходимости допускается хранить при температуре 4 +- 2°С в течение времени не более срока годности пищевых продуктов или замораживать до температуры минус 10 - 12°С и хранить не более 2 недель.

3.3. К исследованию скоропортящихся образцов следует приступать в день их доставки в лабораторию.

4. Определение антибиотиков тетрациклиновой группы

4.1. Принцип метода ИФА

Базовым принципом для количественного определения антибиотиков тетрациклиновой группы в пищевых продуктах является твердофазный конкурентный иммуноферментный анализ на полистироловых планшетах. Метод основан на конкуренции свободного антибиотика из исследуемых образцов и антибиотика, предварительно адсорбированного на твердой фазе (лунке планшета) в составе белкового конъюгата, за центры связывания специфичных к тетрациклинам антител во вносимом растворе. После отделения не связавшихся реагентов количество антител, прореагировавших с иммобилизованным антигеном, определяют с помощью вторичных антивидовых антител, меченных пероксидазой хрена. Количество связавшегося с антителами конъюгата вторичных антител определяют с помощью субстрат - хромогенной смеси. При этом количество определяемого антибиотика, содержащегося в исследуемом образце, обратно пропорционально регистрируемой оптической плотности продукта ферментативной реакции.

4.2. Аппаратура, материалы, реактивы

Перечень и характеристики оборудования и материалов	Нормативные документы, примечания
1	2
Фотометр планшетный вертикального сканирования, с фильтрами, соответствующими длине волны 450 нм	"Униплан", "Мультискан" или иного типа с теми же характеристиками
Дозаторы пипеточные автоматические с переменным объемом 0,02 - 0,2 см3, 0,1 - 1 см3 одноканальные	"Ленпипет", "Термолабсистемс" или иные тех же объемов
Дозаторы пипеточные автоматические восьмиканальные с переменным объемом 0,05 - 0,3 см3
Наконечники для автоматических пипеток объемом до 0,30 см3 и до 1,00 см3 однократного применения	По спецификации изготовителя
Анализатор потенциометрический, погрешность измерений рН +- 0,01 или рН - м	ГОСТ 19881-74 или другие марки с аналогичными характеристиками
Весы аналитические 120 г/0,001 мг	ГОСТ 24104-88Е
Весы лабораторные общего назначения, 2 класса точности, до 200 г/0,1 г	ГОСТ 24104-88Е
Гомогенизатор лабораторный	Типа "Ультратюрракс", "Диакс" или аналогичные
Аквадистиллятор	В соответствии с ГОСТ 6709-72
Холодильник бытовой электрический	ГОСТ 16317-87
Стаканы химические и колбы мерные вместимостью 25, 50, 200 и 500 см3	ГОСТ 1770-74
Пипетки градуированные, 2 класса точности 1, 2, 5, 10 см3	ГОСТ 20292-74 или аналогичные
Часы механические сигнальные	ГОСТ 3145-84
Центрифуга настольная с эффективностью не менее 4000 g	По ТУ 5.375-4261 или иного типа
Колонка для твердофазной экстракции RIDA(R) C18 или аналогичная с такими же характеристиками	По спецификации изготовителя
Цилиндры мерные вместимостью 25 см3	По спецификации изготовителя
Шейкер лабораторный для пробирок	Типа "Вортекс"
Микроиспаритель лабораторный одноканальный	Моделей ПЭ-2300, "Мини-Вап" или других аналогичного назначения
Насос (компрессор) мембранный	РКадет, РКадмирал или иных моделей аналогичного назначения
Устройство для твердофазной экстракции	"Доркус", "Вакэлют" или иных моделей аналогичного назначения
Аппарат универсальный для встряхивания	ТУ 64-1-2451-78
Шкаф (стол) лабораторный с вытяжным устройством
Набор реагентов для количественного определения тетрациклина типа "Ридаскрин Тетрациклин"	По спецификации изготовителя
Дигидрофосфат натрия водный	хч**
Гидрофосфат натрия	хч
Гидрофосфат натрия двухводный	хч
Хлорид натрия	хч
Гидрооксид натрия	хч
Моногидрат лимонной кислоты	хч
Щавелевая кислота	хч
ЭДТА-натриевая соль	хч
Твин 20	По спецификации изготовителя
Метанол* или этанол 95,0%	хч
Этилацетат	хч
н-гексан	хч
Ацетонитрил	хч
Дистиллированная вода
метанол* - ядовитое вещество, требует мер безопасности при работе; хч**- химически чистые вещества

5. Характеристика наборов для иммуноферментного определения тетрациклина

Для иммуноферментного определения тетрациклина могут быть использованы промышленно изготовленные наборы, метрологические характеристики которых не ниже указанных в настоящем документе после процедуры стандартизации их относительно данного метода.

5.1. Состав набора "Ридаскрин Тетрациклин"

Микротитровальный планшет на 96 лунок (12 стрипов по 8 лунок), сенсибилизированных препаратом тетрациклина - 1 шт.

Комплект стандартных растворов тетрациклина со следующими концентрациями: 0 нг/см3, 0,5 нг/см3, 1,5 нг/см3, 4,5 нг/см3, 13,5 нг/см3, 40,5 нг/см3 в буферном растворе по 1,3 мл - 6 флаконов

Раствор антител - 6,0 см3

Коньюгат вторичных антител с пероксидазой - 10,0 см3

Субстрат, содержащий пероксид карбамида (мочевины) - 7,0 см3

Хромоген, содержащий тетраметилбензидин - 7,0 см3

Стоп-реагент, содержащий 1 N серную кислоту - 14,0 см3

Буфер 1, для разбавления стандартных растворов тетрациклина и растворов образцов - 50,0 см3

Буфер 2, для разбавления стандартных образцов при анализе молока - 10,0 см3

Примечание. Набор рассчитан на проведение анализа в 2 повторностях: 42 исследуемых образца и 6 калибровочных проб (всего 96 определений на один планшет).

5.2. Аналитические характеристики набора

5.2.1. Специфичность метода

Метод анализа при использовании набора "Ридаскрин Тетрациклин" характеризуется показателем специфичности*, составляющим для:

Тетрациклина - 100%

Хлортетрациклина - 100%

Окситетрациклина - 10%

Миноциклина - 125%

Ролитетрациклина - 110%

Демеклоциклина - 35%

Доксициклина - 5%

5.2.2. Чувствительность метода

Предел обнаружения тетрациклина и хлортетрациклина в молоке - 0,0015 мг/кг, мясе - 0,006 мг/кг, окситетрациклина в молоке - 0,015 мг/кг, в мясе - 0,06 мг/кг.

Показатель извлекаемости составляет более 70%, в т.ч. в молоке - 75 +- 5%, в мясе и мясопродуктах - 85 +- 15%.

При искусственном загрязнении проб молока 5 мкг/л тетрациклина или 100 мкг/л окситетрациклина степень извлечения составляет 90 +- 10%.

5.3. Рекомендации по использованию наборов "Ридаскрин Тетрациклин"

5.3.1. При проведении испытаний следует использовать реагенты и компоненты, входящие в один и тот же набор. Разбавление или замена реагентов, использование реагентов из набора с другим номером партии может привести к потере чувствительности или ошибке определения.

5.3.2. Хранить наборы следует при температуре в пределах от 2 до 8°С. Категорически не допускается хранение при минусовой температуре и замораживание реагентов набора. Для хранения неиспользованных стрипов (лунок) их упаковывают в оригинальный фольгированный пакет вместе с имеющимся осушителем в плотно закрытом виде.

5.3.3. Следует избегать попадания прямых солнечных лучей на флакон с раствором хромогена из-за его светочувствительности.

5.3.4. В случае окрашивания раствора хромогена его применение для анализа не рекомендуется, поскольку окрашивание раствора хромогена является признаком порчи.

6. Требования техники безопасности при проведении испытаний

Стоп-реагент содержит в своем составе серную кислоту, поэтому следует избегать контакта стоп-реагента с кожей.

7. Проведение испытаний с применением набора "Ридаскрин Тетрациклин"

7.1. Подготовка проб для анализа

Отбор образцов для анализа ведется в соответствии с п. 3 данного документа. Образцы, предназначенные для анализа, должны храниться в холодильнике, в темном месте.

7.1.1. Подготовка проб молока

Молоко объемом 5 см3 охладить до температуры 6 +- 2°С, перенести в центрифужную пробирку, центрифугировать при температуре 4 - 10°С в течение 15 мин при эффективности центрифугирования 4000 g**. Удалить верхний слой жира и перенести аликвоту обезжиренного молока в новую чистую пробирку. Смешать обезжиренное молоко с буфером N 1 в соотношение 1:10. Для анализа использовать 0,05 см3 разведения обезжиренного молока с буфером на 1 лунку планшета. Коэффициент разбавления - 10.

7.1.2. Подготовка проб мяса

7.1.2.1. Приготовление реагентов для пробоподготовки

При исследовании образцов мяса для пробоподготовки необходимо приготовить следующие реагенты:

- метанол (допускается использование спирта этилового 95,0%);

- буфер Макллвейна: 12,9 г лимонной кислоты моногидрата; 10,9 г Na2HPО4; 37,2 г ЭДТА-натриевой соли растворить в дистиллированной воде и довести до объема 1 000 см3; установить рН 3,8;

- раствор 20 мМ щавелевой кислоты в метаноле (этаноле) (1,8 г/л).

7.1.2.2. Приготовление проб

Пробу мяса измельчить с использованием лабораторного гомогенизатора. Далее 5 г гомогенизированной пробы поместить в чистую центрифужную пробирку, смешать с 25 см3 буфера Макллвейна и встряхивать в шейкере в течение 30 мин. Полученную суспензию охладить до температуры 15°С и центрифугировать в течение 10 мин при эффективности центрифугирования 4000 g. Отобрать пипеткой верхний слой в чистую пробирку и повторить с оставшейся пробой экстракцию с 25 см3 буфера Макллвейна. После этого объединить супернатанты (50 см3) и профильтровать раствор через гофрированный фильтр.

7.1.2.3. Очистка раствора методом твердофазной экстракции

Из полученного по п. 7.1.2.2 фильтрата отобрать 5 см3 и очистить раствор методом твердофазной экстракции на колонке RIDA(R) C18 следующим образом:

- предварительно колонку промывают 3 см3 метанола (этанола) со скоростью 1 капля в секунду: при отсутствии устройства для твердофазной экстракции можно использовать разовый пластиковый шприц на 5 см3;

- промыть колонку 2 см3 дистиллированной воды со скоростью 1 капля в секунду;

- пропустить через колонку 5 см3 подготовленного раствора исследуемой пробы со скоростью 15 капель в минуту;

- промыть колонку 3 см3 дистиллированной воды со скоростью 1 капля в секунду;

- удалить из колонки остатки жидкости и сушить колонку в токе воздуха или азота 2 мин;

- адсорбированные на колонке вещества осторожно, со скоростью 15 капель в минуту, элюировать 2 см3 20 мМ раствора щавелевой кислоты в метаноле (этаноле) в чистую пробирку;

- элюат разбавить буфером N 1 в 10 раз (1:9), например, смешав 0,05 см3 элюата и 0,45 см3 буфера N 1. Раствор готов к испытанию в ИФА. Для анализа используют 0,05 см3 раствора.

7.2. Приготовление реагентов для анализа

Перед использованием набора довести температуру всех реагентов до комнатной температуры в пределах 20 - 25°С, а после использования охладить все оставшиеся реагенты до температуры 4 +- 2°С.

В процессе выполнения анализа нельзя допускать высыхания лунок планшета. На всех стадиях инкубации следует избегать воздействия прямого солнечного света. При инкубации планшета рекомендуется закрыть его непрозрачным экраном.

Все разведения реагентов и расчеты представлены для проведения анализа на одном планшете. Построение калибровочной кривой необходимо проводить для каждой серии определений.

7.2.1. Приготовление стандартных растворов

Подготовку стандартных растворов проводят только в стеклянной посуде, не допускается использование пластиковой посуды.

Для подготовки к использованию стандартных растворов тетрациклина концентраты растворов, входящие в состав набора, разбавляют буфером N 1 или буфером N 2 в нижеприведенных пропорциях. После разбавления необходимо тщательно перемешать готовые растворы:

Стандарт 1 (С1). Для приготовления стандарта 1 с концентрацией 0 мкг/л тетрациклина 0,05 см3 концентрата N 1 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 2 (С2). Для приготовления стандарта 2 с концентрацией 0,05 мкг/л тетрациклина 0,05 см3 концентрата N 2 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 3 (С3). Для приготовления стандарта 3 с концентрацией 0, 15 мкг/л тетрациклина 0,05 см3 концентрата N 3 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 4 (С4). Для приготовления стандарта 4 с концентрацией 0,45 мкг/л тетрациклина 0,05 см3 концентрата N 4 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 5 (С5). Для приготовления стандарта 5 с концентрацией 1,35 мкг/л тетрациклина 0,05 см3 концентрата N 5 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 6 (С6). Для приготовления стандарта 6 с концентрацией 4,05 мкг/л тетрациклина 0,05 см3 концентрата N 6 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Буферный раствор N  1 используется для разведения стандартных растворов при исследовании проб мяса и мясопродуктов, птицы и птицепродуктов.

Буферный раствор N 2 используется для разведения стандартных растворов при исследовании проб молока.

Перед использованием буферного раствора N 2, использующегося при исследовании проб молока, следует энергично перемешать раствор с помощью встряхивателя типа "вортекс".

Для каждой серии исследований следует готовить свежие стандартные растворы.

7.2.2. Подготовка моющего буферного раствора

Для приготовления моющего фосфатного буферного раствора с твином навески 0,55 г NaH2PО4 х Н2О, 2,85 г Na2HPО4 х 2Н2О и 9 г NaCl растворить в дистиллированной воде, добавить 1 мл твина 20 и довести до объема 1000 мл; рН моющего фосфатного буфера должен быть 7,3 +-0,1.

7.2.3. Подготовка раствора антител

Раствор антител к тетрациклину (флакон с черной крышкой), входящий в состав набора "Ридаскрин", поставляется в готовом к употреблению виде. Перед употреблением достаточно вскрыть флакон.

7.2.4. Подготовка раствора коньюгата

Раствор коньюгата с ферментом (флакон с красной крышкой) также готов для использования. Перед употреблением достаточно открыть флакон.

7.2.5. Подготовка микротитровального планшета

Перед выполнением анализа из планшета следует извлечь необходимое количество стрипов. Остальные стрипы следует тщательно упаковать в фольгированный пакет вместе с осушителем, закрыть застежку пакета и поместить на хранение при температуре (4 +- 2)°С.

7.3. Процедура анализа

Вставить в рамку планшета стрипы (лунки) в количестве, необходимом для выполнения всех запланированных определений в двух повторностях. Записать координаты лунок, предназначенных для стандартных растворов и подготовленных исследуемых растворов. Пример формы записи показан на рис. 1.

Рис. 1. Пример формы записи координат лунок перед выполнением анализа ("С" - стандартные растворы, "П" - исследуемые пробы)

С1	С1	П3	П3	П11	П11	П19	П19	П27	П27	П35	П35
С2	С2	П4	П4	П12	П12	П20	П20	П28	П28	П36	П36
С3	С3	П5	П5	П13	П13	П21	П21	П29	П29	П37	П37
С4	С4	П6	П6	П14	П14	П22	П22	П30	П30	П38	П38
С5	С5	П7	П7	П15	П15	П23	П23	П31	П31	П39	П39
С6	С6	П8	П8	П16	П16	П24	П24	П32	П32	П40	П40
П1	П1	П9	П9	П17	П17	П25	П25	П33	П33	П41	П41
П2	П2	П10	П10	П18	П18	П26	П26	П34	П34	П42	П42

7.3.1. Добавить по 0,05 см3 стандартных растворов и подготовленных растворов исследуемых образцов в соответствующие пары лунок.

7.3.2. Добавить по 0,05 см3 раствора антител в каждую лунку, перемешать вручную, легкими круговыми движениями рамки планшета по поверхности стола, избегая попадания смеси в соседние лунки, и оставить на инкубацию в течение 1 часа при комнатной температуре в пределах 20 - 25°С.

7.3.3. Вылить жидкость из лунок, перевернув рамку планшета и выбить капли жидкости, оставшиеся в лунках, путем энергичного троекратного постукивания рамки с лунками по столу, накрытому фильтровальной бумагой. Наполнить лунки 0,25 см3 раствора фосфатного моющего буфера и снова удалить раствор из лунок. Выбить капли жидкости, как описано выше. Повторить процедуру промывки лунок раствором фосфатного буфера еще два раза.

7.3.4. Добавить в каждую лунку по 0,1 см3 раствора коньюгата. Тщательно перемешать вручную и оставить на инкубацию в течение 15 мин при комнатной температуре в пределах 20 - 25°С.

7.3.5. Вылить жидкость из лунок, перевернув рамку и тщательно выбить капли жидкости, оставшиеся в лунках, путем троекратного постукивания рамки с лунками по столу, накрытому фильтровальной бумагой. Наполнить лунки 0,25 см3 раствора фосфатного буфера и снова опорожнить лунки. Выбить капли жидкости, как описано выше. Повторить процедуру промывки лунок раствором фосфатного буфера еще два раза.

7.3.6. Добавить по 0,05 см3 субстрата и по 0,05 см3 хромогена в каждую лунку. Тщательно перемешать и инкубировать при комнатной температуре в пределах 20 - 25°С в течение 15 мин в темноте.

7.3.7. Добавить в каждую лунку по 0,1 см3 стоп-реагента и перемешать вручную. В течение 60 мин, не более, после добавления стоп-реагента измерить оптическую плотность в каждой лунке при 450 нм (бланк или нулевое считывание по воздуху), используя фотометр планшетный.

8. Определение количества антибиотиков тетрациклиновой группы в исследованных пробах

Средние из 2 значений оптической плотности, измеренной в лунках со стандартными и исследуемыми растворами, делятся на среднее значение оптической плотности, измеренной в лунках с первым (нулевым) стандартом, результат умножается на 100. Результат измерения оптической плотности измеряемой пробы выражается в процентах от оптической плотности лунки с нулевым стандартом (% поглощения, или относительное поглощение) по формуле:

                     n

                   ОП

                   --- x 100 = % поглощения, где

                     о

                   ОП

  n

ОП  - среднее значение  оптической  плотности в  лунках  со  стандартной

      пробой или с пробами исследуемого образца;

  о

ОП  - среднее значение оптической плотности лунки  с нулевым  стандартом

      (С1).

Примечание. Если величина оптической плотности, измеренной в лунке с нулевым стандартом, составляет значение ниже 0,6 - это может быть признаком порчи реагентов. В таком случае следует заменить реагенты и повторить процедуру.

По величинам относительного поглощения, вычисленным для стандартных растворов, и соответствующим известным значениям концентрации тетрациклина в мкг/кг (мкг/л) строится калибровочная кривая в полулогарифмической системе координат. При правильно проведенном определении калибровочная кривая должна быть почти линейна в диапазоне 0,15 - 1,35 мкг/кг (рис. 2).

Концентрация тетрациклина в растворах исследуемых образцов в мкг/кг (или мкг/л) определяется по калибровочной кривой соответственно относительному поглощению, измеренному и вычисленному для этих растворов.

Для того, чтобы вычислить концентрацию тетрациклина в исследуемой исходной пробе, величину концентрации тетрациклина, полученную по калибровочной кривой, следует умножить на соответствующий коэффициент разбавления. При выполнении пробоподготовки и анализа в полном соответствии с приведенной методикой коэффициент разбавления имеет следующие значения:

Молоко - 10;

Мясо - 40.

Окончательный результат исследования выражают в мг/кг или мг/л, для чего величины, полученные в мкг/кг или мкг/л, делят на 1 000.

9. Обработка результатов

9.1. За окончательный результат измерения принимают среднее арифметическое результатов двух параллельных определений. Окончательный результат округляют до второго десятичного знака.

9.2. Метрологические характеристики иммуноферментного метода определения антибиотиков тетрациклиновой группы в продуктах питания животного происхождения (молоке, мясе) - табл. 1.

Таблица 1

Статистический параметр	Соединение - тетрациклин
	мясо	молоко
1	2	3
Нижний предел определения, мг/кг	0,006	0,0015
Интервал надежного определения, мг/кг	0,01 - 0,1	0,005 - 0,05
Среднее значение открываемости (показатель правильности), %	80 - 115
Допустимое расхождение между результатами двух параллельных определений тетрациклина, полученными в одной лаборатории в одной серии измерений (сходимость), при Р = 0,95%, не должно превышать, %	9,0
Допустимое расхождение между результатами двух параллельных определений тетрациклина, выполненных в двух разных лабораториях (воспроизводимость), при Р = 0,95% не должно превышать по отношению к среднему, %	10,0

9.3. Если расхождение результатов двух параллельных определений (сходимость и воспроизводимость) превышает требования по п. 9.2, то повторно проводят два новых параллельных определения.

10. Определение сульфаниламидных препаратов в продуктах животного происхождения методом иммуноферментного анализа

10.1. Принцип метода

Сущность метода и принципиальная схема определения сульфаметазина с помощью иммуноферментного анализа в основном соответствует описанию, приведенному в п. 4 для антибиотиков тетрациклиновой группы. Отличие состоит в использовании первичных антител захвата, адсорбированных на поверхности планшета, неконьюгированных вторичных анти-видовых антител и сульфаметазина, коньюгированного с пероксидазой. Дополнительно предусмотрена процедура качественного определения сульфаниламидных препаратов в мясных и молочных продуктах, а также метод экспрессного определения количества сульфаниламидов в молоке с использованием тест-системы "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин".

10.2. Аппаратура, материалы, реактивы

Перечень и характеристики оборудования и материалов	Нормативные документы, примечания
1	2
Фотометр планшетный вертикального сканирования, с фильтрами, соответствующими длине волны 450 нм	"Униплан", "Мультискан" или иного типа с теми же характеристиками
Дозаторы пипеточные автоматические с переменным объемом 0,02 - 0,2 см3, 0,1 - 1 см3 одноканальные	"Ленпипет", "Термолабсистемс" или иные тех же объемов
Дозаторы пипеточные автоматические 8-ми канальные с переменным объемом 0,05 - 0,3 см3
Наконечники для автоматических пипеток объемом до 0,30 см3 и до 1,00 см3 однократного применения
Анализатор потенциометрический, погрешность измерений рН +- 0,01 или рН - метр	ГОСТ 19881-74 или другие марки с аналогичными характеристиками
Весы аналитические 120 г/0,001 мг	ГОСТ 24104-88Е
Весы лабораторные общего назначения, 2 класса точности, до 200 г/0,1 г	ГОСТ 24104-88Е
Гомогенизатор лабораторный	Типа "Ультратюрракс", "Диакс" или аналогичные
Аквадистиллятор	В соответствии с ГОСТ 6709-72
Холодильник бытовой электрический	ГОСТ 16317-87
Стаканы химические и колбы мерные вместимостью 25, 50, 200 и 500 см3	ГОСТ 1770-74
Пипетки градуированные, 2 класса точности на 1, 2, 5, 10 см3	ГОСТ 20292-74 или аналогичные
Часы механические сигнальные	ГОСТ 3145-84
Центрифуга настольная с эффективностью центрифугирования не менее 4000 g	По ТУ 5.375-4261 или иного типа
Цилиндры мерные вместимостью 25 см3
Шейкер лабораторный для пробирок	Типа "Вортекс"
Микроиспаритель лабораторный одноканальный	Моделей ПЭ-2300, "Мини-Вап" или других аналогичного назначения
Насос (компрессор) мембранный	РКадет, РКадмирал или иных моделей аналогичного назначения
Аппарат универсальный для встряхивания	ТУ 64-1-2451-78
Шкаф (стол) с вытяжным устройством	По спецификации изготовителя
Набор реагентов для количественного определения тетрациклина типа "Ридаскрин Сульфаметазин"	По спецификации изготовителя
Набор реагентов для количественного определения сульфаметазина типа "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин"	По спецификации изготовителя
Этилацетат	хч*
н-гексан	хч
Ацетонитрил	хч
Дистиллированная вода
хч*- химически чистые вещества

10.3. Состав набора "Ридаскрин Сульфаметазин"

Микротитровальный планшет (12 х 8), 96 лунок, сенсибилизированных специфическими антителами 1 шт.

Комплект концентрированных стандартных растворов сульфаметазина в буфере с концентрациями: 0 мкг/л, 10 мкг/л, 30 мкг/л, 90 мкг/л, 270 мкг/л, 810 мкг/л, по 1300 мкл каждого, всего 6 1 шт. растворов

Антитела к сульфаметазину, концентрат (черная крышка) 1 шт.

Коньюгат сульфаметазина с пероксидазой, концентрат (красная крышка) 1 шт.

Субстрат, содержащий пероксид карбамида, 7 мл (зеленая крышка) 1 шт.

Хромоген, содержащий тетраметилбензидин, 7 мл (голубая крышка) 1 шт.

Стоп-реагент, содержит 1 N серную кислоту, 14 мл (желтая крышка) 1 шт.

Буфер 1, для разбавления буфера 2, препаратов коньюгата и антител, стандартных растворов и растворов образцов, 60 мл 1 шт.

Буфер 2, концентрированный, для разбавления стандартных растворов (для молока) 1 шт.

В состав набора входят материалы и реагенты в количестве, достаточном для выполнения 96 определений (включая калибровку по стандартным растворам).

10.4. Состав набора "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин"

Микротитровальный планшет (6 х 8), 48 лунок, сенсибилизированных специфическими антителами 1 шт.

Комплект концентрированных стандартных растворов сульфаметазина в буфере с концентрациями: 0 мкг/л, 50 мкг/л, 150 мкг/л, 450 1 шт. мкг/л, 1350 мкг/л по 1,3 мл каждого, всего 5 растворов

Антитела к сульфаметазину (черная крышка), 3 мл 1 шт.

Коньюгат сульфаметазина с пероксидазой, (красная крышка), 3 мл 1 шт.

Субстрат/хромоген (белая крышка), 6 мл 1 шт.

Стоп-реагент, содержит 1 N серную кислоту (желтая крышка), 6 мл 1 шт.

Буфер 1, концентрированный (х20) для разбавления стандартных 1 шт. растворов и растворов образцов, 60 мл

Буфер 2, готовый к использованию, для разбавления стандартных растворов (для молока), 10 мл 1 шт.

В состав набора входят материалы и реагенты в количестве, достаточном для выполнения 48 определений (включая калибровку по стандартным растворам).

10.5. Аналитические характеристики наборов для определения сульфаниламидных препаратов

Наборы "Ридаскрин Сульфаметазин" и "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин".

Специфичность

Перекрестная чувствительность наборов реагентов наборов "Ридаскрин Сульфаметазин" и "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин" составляет:

Сульфаметазин (сульфадимезин, сульфадимидин)	100%
Сульфамеразин	56,1%
Сульфамоксол	2,2%
Сульфадиазин	0,9%

Чувствительность

Предел обнаружения сульфаметазина с помощью набора "Ридаскрин Сульфаметазин" составляет 0,001 мг/кг (мг/л). С учетом коэффициента разбавления предел обнаружения составляет 0,01 мг/л в молоке, 0,002 мг/кг в мясе и субпродуктах.

Предел обнаружения сульфаметазина с помощью набора "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин" составляет 0,005 мг/кг (мг/л). С учетом коэффициента разбавления предел обнаружения сульфаметазина в молоке с помощью набора "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин" составляет 0,01 мг/кг (мг/л).

Извлекаемость

Для проб молока степень извлечения сульфаметазина составляет 99% (при коэффициенте вариации 4,7%).

Для проб мяса степень извлечения сульфаметазина составляет 95% (при коэффициенте вариации 4,9%).

10.6. Рекомендации по использованию наборов "Ридаскрин Сульфаметазин" и "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин"

Все рекомендации, приведенные в п. 5.3. для тест-наборов "Ридаскрин Тетрациклин" аналогичны для наборов "Ридаскрин Сульфаметазин" и "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин".

11. Проведение испытаний с применением набора "Ридаскрин Сульфаметазин"

11.1. Подготовка необходимых реагентов

11.1.1. Приготовление буфера N 1

Буфер N 1 входит в набор в виде концентрата (20х).

Перед выполнением исследования необходимо разбавить буфер N 1 дистиллированной водой в 20 раз, например, смешать 50 мл буфера и 950 мл дистиллированной воды. Рекомендуется разбавлять буфер в 1 этап.

Срок хранения разбавленного буфера нанесен на этикетку флакона с концентрированным буфером при условии хранения при температуре 4 +- 2°С.

11.1.2. Приготовление буфера N 2

Буфер N 2 используется для приготовления стандартных растворов сульфаметазина при анализе проб молока. Для приготовления буферного раствора N 2, к 1 мл концентрата буфера N 2 (флакон с белой крышкой) следует добавить 9 мл разбавленного буферного раствора N 1 (по п. 11.1.1) и тщательно перемешать (например, при помощи шейкера типа "Вортекс"). Мутность раствора не влияет на результат определения, однако осадок на дне флакона после перемешивания должен быть распределен в объеме раствора.

11.2. Подготовка проб для анализа

Отбор проб для анализа ведется в соответствии с разделом 3. Образцы, предназначенные для анализа, должны храниться в холодильнике, в темном месте. Перед анализом пробы должны быть тщательно перемешаны.

11.3. Подготовка проб молока к исследованию

11.3.1. Обезжиренное молоко

Пробу обезжиренного молока смешать с буфером N 1, приготовленным в соответствии с п. 11.1.1. в соотношении 1:9. Например, смешать 0,05 см3 молока и 0,45 см3 буфера N 1.

Для анализа использовать 0,05 см3 раствора на 1 лунку планшета.

11.3.2. Молоко с содержанием жира 1% и более

Пробу молока объемом 5 см3 охладить до +8°С, перенести в стеклянную центрифужную пробирку, центрифугировать при температуре в пределах 8 - 12°С в течение 10 мин при 3000g (см. примечание к п. 7.1.1). При отсутствии центрифуги с охлаждением, допускается охлаждение пробы перед центрифугированием до температуры 4°С.

Удалить верхний слой жира и перенести аликвоту обезжиренного молока в новую чистую пробирку и смешать с буфером N 1 в отношении 1:9, например, смешать 0,05 см3 молока и 0,45 см3 буфера N 1. Для анализа использовать 0,05 см3 раствора на 1 лунку планшета.

11.4. Подготовка проб мяса к исследованию

11.4.1. Приготовление реагентов для пробоподготовки

При исследовании образцов мяса для пробоподготовки необходимо подготовить следующие реагенты:

1. Этилацетат

2. н-гексан

3. Ацетонитрил

4. Дистиллированная вода

11.4.2. Пробоподготовка для качественного определения сульфаметазина

Исследуемую пробу мяса освободить от жировой ткани, взвесить 1 г мяса и добавить 10 см3 буфера N 1, гомогенизировать пробу с использованием миксера или лабораторного гомогенизатора. Полученную пробу гомогенизированного мяса при комнатной температуре центрифугировать в течение 10-ти минут при 4000 g (см. примечание к п. 7.1.1). Отобрать супернатант с помощью пипетки Пастера (избегая попадания жира в пипетку). Для анализа использовать 0,05 см3 супернатанта на лунку планшета.

11.4.3. Пробоподготовка для количественного определения сульфаметазина

Исследуемую пробу мяса освободить от жировой ткани и гомогенизировать пробу мяса с использованием лабораторного гомогенизатора. Далее 5 г гомогената поместить в чистую центрифужную пробирку, смешать с 20 см3 84%-го раствора ацетонитрила в воде и встряхивать на шейкере в течение 10 мин. Полученную суспензию центрифугировать при температуре 15°С в течении 10 мин при 3000 g. Разбавить 3 см3 супернатанта с 3 см3 дистиллированной воды. Добавить к раствору 4,5 см3 этилацетата и встряхивать на шейкере в течение 10 мин. Центрифугировать раствор при температуре 15°С в течение 10 минут при 3000 g. Этилацетатный слой перенести в другую пробирку и испарить экстракт досуха с помощью микроиспарителя.

Растворить сухой остаток в 1,5 см3 разбавленного буфера N 1. Для обезжиривания раствора добавить в пробирку 1,5 см3 гексана и встряхивать на шейкере в течение 5 мин. Центрифугировать раствор, как описано выше. С помощью пипетки Пастера удалить полностью гексановый слой. Для анализа использовать 0,05 см3 оставшейся в пробирке водной фазы на лунку планшета.

11.5. Приготовление реагентов для анализа

Построение калибровочной кривой необходимо проводить для каждой серии определений при использовании стрипов (лунок) одного тест-набора.

11.5.1. Приготовление стандартных растворов

Для приготовления стандартных растворов сульфаметазина концентраты растворов, входящие в состав набора, следует разбавить готовым буфером N 1 или готовым буфером N 2 в нижеприведенных пропорциях. После разбавления необходимо тщательно перемешать готовые растворы. Для разбавления нельзя использовать пластиковую посуду, необходимо использовать только стеклянную посуду.

Для каждой серии исследований следует готовить свежие стандартные растворы.

11.5.1.1. Приготовление стандартных растворов при количественном определении сульфаметазина.

Стандарт 1 (С1). Для приготовления стандарта 1 с концентрацией 0 мкг/л сульфаметазина 0,05 см3 концентрата N 1 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 2 (С2). Для приготовления стандарта 2 с концентрацией 1 мкг/л сульфаметазина 0,05 см3 концентрата N 2 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 3 (С3). Для приготовления стандарта 3 с концентрацией 3 мкг/л сульфаметазина 0,05 см3 концентрата N 3 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 4 (С4). Для приготовления стандарта 4 с концентрацией 9 мкг/л сульфаметазина 0,05 см3 концентрата N 4 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 5 (С5). Для приготовления стандарта 5 с концентрацией 27 мкг/л сульфаметазина 0,05 см3 концентрата N 5 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 6 (С6). Для приготовления стандарта 6 с концентрацией 81 мкг/л сульфаметазина 0,05 см3 концентрата N 6 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Буферный раствор N 1, приготовленный по п. 11.1.1, используется для разведения стандартных растворов при исследовании проб мяса и мясопродуктов, птицы и птицепродуктов.

Буферный раствор N 2, приготовленный по п. 11.1.2, используется только для разведения стандартных растворов при исследовании проб молока. Перед использованием буфера N 2 следует энергично перемешать раствор с помощью встряхивателя типа "вортекс".

11.5.1.2. Приготовление стандартных растворов при качественном определении сульфаметазина.

При проведении качественного определения сульфаметазина используют только два стандартных раствора:

Стандарт 1:0,05 см3 концентрата N 1 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора - концентрация сульфаметазина - 0 мг/кг (отрицательный контроль).

Стандарт 4:0,05 см3 концентрата N 4, содержащего 9 мкг/л сульфаметазина, смешивают с 0,45 см3 буферного раствора (положительный контроль).

11.5.2. Приготовление раствора коньюгата

Коньюгат сульфаметазина с ферментом (флакон с красной крышкой) поставляется в концентрированном виде. Поскольку разбавленный раствор коньюгата имеет ограниченную стабильность, следует готовить раствор непосредственно перед проведением анализа. Перед разбавлением концентрированного раствора коньюгата следует осторожно встряхнуть содержимое флакона.

Для приготовления готового к использованию раствора коньюгата следует разбавить концентрат коньюгата готовым буферным раствором N 1 в отношении 1:11 (например, смешать 200 мкл концентрата коньюгата с 2 мл готового буфера N 1 - данного количества раствора коньюгата достаточно для 4 стрипов (32 лунки).

11.5.3. Приготовление раствора антител

Антитела к сульфаметазину (флакон с черной крышкой) поставляются в концентрированном виде. Поскольку разбавленный раствор антител имеет ограниченную стабильность, следует готовить раствор по потребности. Перед разбавлением концентрата антител необходимо осторожно встряхнуть содержимое флакона.

Для приготовления готового раствора антител следует разбавить концентрат готовым буферным раствором N 1 в отношении 1:11; например, смешать 200 мкл концентрата антител с 2 мл готового буфера N 1 - данного разведения достаточно для 4 стрипов (32 лунки).

12. Процедура анализа

Вставить в рамку планшета стрипы (лунки) в количестве, необходимом для выполнения всех запланированных определений. Записать координаты лунок, предназначенных для стандартных растворов и подготовленных исследуемых растворов. Пример формы записи приведен на рис. 3 - 4.

Рис. 3. Пример формы записи координат лунок перед выполнением качественного анализа на наличие сульфаниламидных препаратов
("С" - стандартные растворы, "П" - исследуемые пробы)

С1	П7	П15	П23	П31	П39	П47	П55	П63	П71	П79	П87
С2	П8	П16	П24	П32	П40	П48	П56	П64	П72	П80	П88
П1	П9	П17	П25	П33	П41	П49	П57	П65	П73	П81	П89
П2	П10	П18	П26	П34	П42	П50	П58	П66	П74	П82	П90
П3	П11	П19	П27	П35	П43	П51	П59	П67	П75	П83	П91
П4	П12	П20	П28	П36	П44	П52	П60	П68	П76	П84	П92
П5	П13	П21	П29	П37	П45	П53	П61	П69	П77	П85	П93
П6	П14	П22	П30	П38	П46	П54	П62	П70	П78	П86	П94

Рис. 4. Пример формы записи координат лунок перед выполнением количественного анализа на наличие сульфаниламидных препаратов
("С" - стандартные растворы, "П" - исследуемые пробы)

C1	C1	П3	П3	П11	П11	П19	П19	П27	П27	П35	П35
C2	C2	П4	П4	П12	П12	П20	П20	П28	П28	П36	П36
C3	C3	П5	П5	П13	П13	П21	П21	П29	П29	П37	П37
C4	C4	П6	П6	П14	П14	П22	П22	П30	П30	П38	П38
C5	C5	П7	П7	П15	П15	П23	П23	П31	П31	П39	П39
C6	C6	П8	П8	П16	П16	П24	П24	П32	П32	П40	П40
П1	П1	П9	П9	П17	П17	П25	П25	П33	П33	П41	П41
П2	П2	П10	П10	П18	П18	П26	П26	П34	П34	П42	П42

12.1. Добавить по 0,05 см3 стандартных растворов и подготовленных растворов исследуемых образцов в соответствующие лунки.

12.2. Добавить по 0,05 см3 разбавленного раствора коньюгата в каждую лунку.

12.3. Добавить по 0,05 см3 раствора антител в каждую лунку, перемешать вручную, легкими круговыми движениями по поверхности стола, избегая попадания смеси в соседние лунки, и оставить на инкубацию в течение 2-х часов при комнатной температуре в пределах 20 - 25°С.

12.4. Вылить жидкость из лунок, перевернуть рамку планшета и выбить капли жидкости, оставшиеся в лунках, путем энергичного троекратного постукивания рамки с лунками по столу, накрытому фильтровальной бумагой. Наполнить лунки 0,25 см3 дистиллированной воды и снова опорожнить лунки. Выбейте капельки жидкости как описано выше. Повторите процедуру промывки лунок дистиллированной водой еще два раза.

12.5. Добавить в каждую лунку по 0,05 см3 субстрата и по 0,05 см3 хромогена. Осторожно перемешать и инкубировать при комнатной температуре в пределах 20 - 25°С в течение 30 мин в темноте.

12.6. Добавить в каждую лунку по 2 капли (0,1 см3) стоп-реагента и перемешать вручную. В течение 60 мин после добавления стоп-реагента измерить оптическую плотность в каждой лунке при 450 нм ("бланк" или нулевое считывание по воздуху), используя фотометр планшетный.

Примечание. При качественном анализе допускается использовать по одной лунке на каждую исследуемую пробу продукта и стандартного раствора.

13. Определение количества сульфаметазина в исследованных пробах

Определение количества сульфаметазина в исследованных пробах проводится аналогично описанному в п. 8 определению количества антибиотиков тетрациклиновой группы.

Калибровочная кривая также строится в полулогарифмической системе координат и должна быть почти линейна в диапазоне концентраций сульфаметазина 1 - 27 мкг/кг (пример - рис. 5).

Для того чтобы вычислить концентрацию сульфаметазина в исследуемой исходной пробе, величину концентрации сульфаметазина, полученную по калибровочной кривой, следует умножить на соответствующий коэффициент разбавления. При выполнении пробоподготовки и анализа в полном соответствии с приведенной методикой коэффициент разбавления имеет следующие значения:

Молоко - 10;

Мясо - 2.

13.1. Обработка результатов

За окончательный результат измерения принимают среднее арифметическое результатов двух параллельных определений. Окончательный результат округляют до второго десятичного знака.

13.2. Учет результатов при качественном определении сульфаметазина в исследованных пробах

При качественном определении сульфаметазина результат определяется как положительный или отрицательный. Результат интерпретируется как отрицательный (концентрация сульфаметазина в исследуемом образце меньше 0,01 мг/кг), если оптическая плотность, измеренная в лунке с пробой, больше, чем порог интерпретации.

Порог интерпретации результата определяется как произведение оптической плотности лунки со стандартом N 4 на коэффициент, равный 1,2 (коэффициент 1,2 отражает потери сульфаметазина при упрощении пробоподготовки).

Результат интерпретируется как положительный (концентрация сульфаметазина в исследуемом образце больше 0,01 мг/кг) если оптическая плотность, измеренная в лунке с пробой, меньше, чем порог интерпретации.

14. Проведение испытаний с применением набора "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин"

14.1. Подготовка необходимых реагентов

14.1.1. Приготовление буфера N 1

Рекомендации по приготовлению буфера N 1 аналогичны приведенным в п. 11.1.1.

14.2. Подготовка проб для анализа

Отбор проб для анализа ведется в соответствии с п. 3. Образцы, предназначенные для анализа, должны храниться в холодильнике, в темном месте. Перед анализом пробы должны быть тщательно перемешаны.

14.3. Подготовка проб молока к исследованию

14.3.1. Обезжиренное молоко

Пробу обезжиренного молока смешать с буфером N 1, приготовленным в соответствии с п. 11.1.1. в соотношении 1:1. Например, смешать 0,5 см3 молока и 0,5 см3 буфера N 1. Для анализа использовать 0,05 см3 раствора на 1 лунку планшета.

14.3.2. Молоко с содержанием жира 1% и более

Пробу молока объемом 5 см3 охладить до температуры 8°С, перенести в стеклянную центрифужную пробирку, центрифугировать при температуре 8 - 12°С в течение 10 мин при 3000 g (см. примечание к п. 7.1.1). При отсутствии центрифуги с охлаждением допускается предварительное охлаждение пробы перед центрифугированием до температуры 4°С.

Удалить верхний слой жира и перенести аликвоту обезжиренного молока в новую чистую пробирку и смешать с буфером N 1 в соотношении 1:1. Например, смешать 0,5 см3 молока и 0,5 см3 буфера N 1. Для анализа использовать 0,05 см3 раствора на 1 лунку планшета.

14.3.3. Молоко сырое

Пробу молока объемом 5 см3 охладить, центрифугировать и удалить верхний слой жира согласно п. 11.3.2, после чего перенести аликвоту обезжиренного молока в новую чистую пробирку и смешать с буфером N 1 в соотношении 1:3. Например, смешать 0,1 см3 молока и 0,3 см3 буфера N 1. Для анализа использовать 0,05 см3 раствора на 1 лунку планшета.

14.4. Приготовление реагентов для анализа

Построение калибровочной кривой необходимо проводить для каждой серии измерений в отдельности.

14.4.1. Приготовление стандартных растворов при количественном определении сульфаметазина с использованием набора "Ридаскрин Фаст сульфаметазин"

Для приготовления стандартных растворов сульфаметазина концентраты растворов, входящие в состав набора, следует разбавить буферным раствором N 2 в нижеприведенных пропорциях. После разбавления необходимо тщательно перемешать готовые растворы. Для разбавления необходимо использовать только стеклянную посуду, нельзя использовать пластиковую посуду.

Для каждой серии исследований следует готовить свежие стандартные растворы:

Стандарт 1 (С1). Для приготовления стандарта 1 с концентрацией 0 мкг/л сульфаметазина 0,05 см3 концентрата N 1 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 2 (С2). Для приготовления стандарта 2 с концентрацией 5 мкг/л сульфаметазина 0,05 см3 концентрата N 2 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 3 (С3). Для приготовления стандарта 3 с концентрацией 15 мкг/л сульфаметазина 0,05 см3 концентрата N 3 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 4 (С4). Для приготовления стандарта 4 с концентрацией 45 мкг/л сульфаметазина 0,05 см3 концентрата N 4 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

Стандарт 5 (С5). Для приготовления стандарта 5 с концентрацией 135 мкг/л сульфаметазина 0,05 см3 концентрата N 5 смешивают с 0,45 см3 буферного раствора

ГАРАНТ:

Нумерация пунктов приводится в соответствии с источником

14.3. Процедура анализа

Вставить в рамку планшета стрипы (лунки) в количестве, необходимом для выполнения всех запланированных определений. Записать координаты лунок, предназначенных для стандартных растворов и подготовленных исследуемых растворов. Пример формы записи приведен на рис. 6.

Рис. 6. Пример формы записи координат лунок перед выполнением анализа ("С" - стандартные растворы, "П" - исследуемые пробы)

               /----------------------------------------\

               |  С1  |  П4  | П12  | П20 | П28  | П36  |

               |------+------+------+-----+------+------|

               |  С2  |  П5  | П13  | П21 | П29  | П37  |

               |------+------+------+-----+------+------|

               |  С3  |  П6  | П14  | П22 | П30  | П38  |

               |------+------+------+-----+------+------|

               |  С4  |  П7  | П15  | П23 | П31  | П39  |

               |------+------+------+-----+------+------|

               |  С5  |  П8  | П16  | П24 | П32  | П40  |

               |------+------+------+-----+------+------|

               |  П1  |  П9  | П17  | П25 | П33  | П41  |

               |------+------+------+-----+------+------|

               |  П2  | П10  | П18  | П26 | П34  | П42  |

               |------+------+------+-----+------+------|

               |  П3  | П11  | П19  | П27 | П35  | П43  |

               \----------------------------------------/

14.3.1. Добавить по 0,05 см3 стандартных растворов и подготовленных растворов исследуемых образцов в соответствующие лунки планшета.

14.3.2. Добавить по 0,05 см3 раствора коньюгата в каждую лунку.

14.3.3. Осторожно, избегая образования пены, перемешать раствор антител, встряхнув несколько раз флакон, после чего добавить по 0,05 см3 раствора антител в каждую лунку, перемешать вручную, легкими круговыми движениями по поверхности стола, избегая попадания смеси в соседние лунки, и оставить на инкубацию в течение 10 мин (+- 1 мин) при комнатной температуре в пределах 20 - 25°С.

14.3.4. Вылить жидкость из лунок, перевернуть рамку планшета и выбить капли жидкости, оставшиеся в лунках, путем энергичного троекратного постукивания рамки с лунками по столу, накрытому фильтровальной бумагой. Наполнить лунки 0,25 см3 готового буфера N 1 и снова опорожнить лунки. Выбить капли жидкости, как описано выше. Повторить процедуру промывки буфером N 1 еще два раза.

14.3.5. Добавить в каждую лунку по 2 капли (0,1 см3) раствора хромогена/субстрата. Осторожно перемешать, как описано в п. 14.3.3 и инкубировать при комнатной температуре в пределах 20 - 25°С в течение 5 мин (+- 0,5 мин) в темноте. Не встряхивать планшет во время инкубации.

14.3.6. Добавить в каждую лунку по 2 капли (0,1 см3) стоп-реагента и перемешать вручную. В течение 10 мин после добавления стоп-реагента измерить оптическую плотность в каждой лунке при длине волны 450 нм ("бланк" или нулевое считывание по воздуху), используя фотометр планшетный.

14.4. Определение количества сульфаметазина в исследованных пробах

Определение количества сульфаметазина в исследованных пробах проводится аналогично описанному в п. 8 определению тетрациклина.

Калибровочная кривая также строится в полулогарифмической системе координат и должна быть почти линейна в диапазоне концентраций сульфаметазина 0,005 - 0,045 мг/кг (пример - рис. 7).

Для того, чтобы определить количество сульфаметазина в исследуемой исходной пробе, величину концентрации сульфаметазина, полученную по калибровочной кривой, следует умножить на соответствующий коэффициент разбавления. При выполнении пробоподготовки и анализа в соответствии с приведенной методикой коэффициент разбавления имеет следующие значения:

Обезжиренное молоко - 2

Молоко с массовой долей жира 1% и более - 2

Сырое молоко - 4

15. Обработка результатов

15.1. За окончательный результат измерения принимают среднее арифметическое число результатов двух параллельных определений. Окончательный результат округляют до второго десятичного знака.

15.2. Метрологические характеристики иммуноферментного метода определения сульфаниламидных препаратов в продуктах питания животного происхождения (молоке, мясе) изложены в табл. 2.

Таблица 2

Статистический параметр	Соединение - сульфаметазин
Нижний предел определения, мг/кг	Мясо - 0,002 молоко - 0,01
Интервал надежного определения, мг/кг	0,01 - 0,1
Среднее значение открываемости (показатель правильности), %	90 +-17
Допустимое расхождение между результатами двух параллельных определений сульфаметазина, полученными в одной лаборатории в одной серии измерений (сходимость), при Р = 0,95%, не должно превышать, %	8,0
Допустимое расхождение между результатами двух параллельных определений сульфаметазина, выполненных в двух разных лабораториях (воспроизводимость), при Р = 0,95% не должно превышать по отношению к среднему, %	12,0

15.3. Если расхождение результатов двух параллельных определений (сходимость и воспроизводимость) превышает требования по п. 15.2, то повторно проводят два новых параллельных определения.

______________________________

* - гарантируется изготовителем

** Эффективность центрифугирования измеряется в g и зависит от скорости и радиуса вращения (см. технический паспорт имеющейся центрифуги). Например, при использовании центрифуги ОПН-8 с угловым ротором эффективности 4000 g соответствует скорость вращения ротора около 7000 об/мин.

Руководитель Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главный государственный санитарный врач Российской Федерации

Г.Г. Онищенко