Откройте актуальную версию документа прямо сейчас
Если вы являетесь пользователем интернет-версии системы ГАРАНТ, вы можете открыть этот документ прямо сейчас или запросить по Горячей линии в системе.
Государственный стандарт качества лекарственного средства
Общая фармакопейная статья ОФС 42
"Полимеразная цепная реакция"
Вводится впервые
Полимеразная цепная реакция (ПЦР) представляет собой многократное ферментно-опосредованное умножение (амплификацию) заданного участка ДНК длиной от десятков до нескольких тысяч пар оснований (п.о.), границы которого соответствуют коротким олигонуклеотидным последовательностям - праймерам, т.е. ПЦР представляет собой циклический синтез in vitro выбранного фрагмента ДНК. Каждый цикл состоит из трёх этапов: денатурации, гибридизации и синтеза цепи ДНК. При выявлении РНК-содержащих микроорганизмов ПЦР проводят после процедуры обратной транскрипции.
Специфичность реакции обеспечивается прежде всего правильным выбором праймеров.
После окончания реакции наличие искомого фрагмента выявляют различными методами, наиболее ракспространены электрофоретическое разделение и детекция флуоресценции в режиме реального времени.
ПЦР может использоваться как для качественной реакции (есть - нет), так и для полуколичественного и количественного определения.
Пробоподготовка
Определяемая ДНК может быть выделена из исследуемого образца либо вноситься в реакцию без предварительной подготовки.
В первом случае следует подтвердить, что процедура выделения не влияет на результаты ПЦР. С этой целью целесообразно провести аналогичную процедуру выделения с использованием стандартного образца ДНК.
Во втором случае, при внесении в реакцию тестируемого материала без проведения его предварительной подготовки, необходимо подтвердить отсутствие влияния на результаты ПЦР веществ, входящих в состав исследуемого образца. Для этого целесообразно использовать метод добавок.
Необходимо предусмотреть использование стандартных или контрольных образцов для оценки эффективности выделения нуклеиновых кислот.
Используемое оборудование, реагенты, приготовление растворов и все этапы должны быть указаны в частной фармакопейной статье.
Проведение реакции
ПЦР проводят в буферно-солевом растворе с определенным рН, содержащем необходимую концентрацию ионов магния, четыре вида дезоксирибонуклеозид-трифосфатов и термостабильную Taq-полимеразу (ДНК-полимераза микроорганизма Termus aquaticus обладает уникальным свойством сохранять активность при температуре 95°С). Состав буферного раствора, концентрацию реагентов, приготовление растворов указывают в частной фармакопейной статье. Реакция инициируется парой праймеров, каждый из которых представляет собой последовательность из 20-25 нуклеотидов, один праймер комплементарен последовательности ДНК с 5'-конца амплифицируемого участка, а другой - с 3'-конца (на противоположной цепочке ДНК). Последовательность праймеров, их концентрацию указывают в частной фармакопейной статье.
Целесообразно предусмотреть использование положительных и отрицательных стандартных и/или контрольных образцов для оценки эффективности амплификации.
ПЦР осуществляют в автоматическом режиме на специальных программируемых приборах - амплификаторах, контролирующих заданные параметры реакции: температуру и длительность отдельных этапов цикла (денатурация, гибридизация и синтез цепи ДНК), число циклов и т.д.
Денатурация. Выдерживание при температуре (94 - 96)°С в течение установленного времени; при этом двойная цепь денатурируется (расплетается) с образованием двух одноцепочечных молекул ДНК.
Гибридизация (отжиг). При температуре (45 - 65)°С в течение установленного времени происходит отжиг праймеров и одноцепочечной ДНК-матрицы, в процессе которого праймеры распознают комплементарные им участки ДНК-матрицы.
Синтез цепи ДНК (элонгация). При температуре (65 - 72)°С в течение установленного времени происходит репликация (достраивание) одной из одноцепочечных ДНК от точки связывания праймера "вправо" (для одной цепи ) и "влево" (для другой цепи ДНК). В результате вновь синтезируемые молекулы ДНК становятся, в свою очередь, матрицей для аналогичного синтеза новых копий.
Продолжительность цикла составляет 0,5 - 5 минут. Сразу после окончания первого цикла процедура повторяется и происходит экспоненциальное увеличение содержания фрагмента ДНК. Обычно ПЦР состоит из 25-40 циклов. В каждом цикле происходит удвоение числа копий амплифицируемого участка ДНК, приводящее к увеличению в геометрической прогрессии общего содержания продуктов реакции.
Эффективность ПЦР и количество синтезированного при этом заданного фрагмента ДНК зависит от многих факторов, среди которых следует выделить: тип и термопроводящие характеристики амплификатора, тип используемой ДНК-полимеразы, состав буферного раствора, объем реакционной смеси; длину и состав праймеров; выбранную специфическую последовательность ДНК.
Используемое оборудование и режим амплификации указывают в частной фармакопейной статье.
Детекция продуктов амплификации
Электрофоретическое разделение. Продукты амплификации анализируют с помощью различных методов электофореза в агарозном или полиакриламидном гелях. Для визуализации ДНК используют окрашивание интеркалирующим красителем, обычно бромистым этидием (дающим характерное красноватое свечение при исследовании в проходящем ультрафиолетовом свете), нитратом серебра или используют мечение различными флуорохромами (дающими флюоресценцию определенной длины волны при возбуждении лазерным лучом). Для оценки размеров амплифицированных фрагментов используют маркеры и стандартные образцы.
Концентрацию геля, приготовление растворов, маркеры, стандартные образцы и условия электрофореза указывают в частной фармакопейной статье.
Детекция флуоресценции в режиме реального времени. Способ детекции амплифицированного фрагмента с использованием флуоресцентных меток возможен при проведении ПЦР в реальном времени (Real Time PCR).
Отличительной чертой данного метода, в сравнении с классической ПЦР, является возможность количественного определения ДНК/РНК в исследуемом материале, отсутствие стадии электрофореза и автоматическая регистрация детектируемого сигнала.
Метод основан на измерении флуоресцентного сигнала в каждом цикле амплификации. Интенсивность сигнала пропорциональна концентрации продукта ПЦР, что в сочетании с возможностью оценить кинетику процесса, позволяет проводить количественное определение выбранной последовательности.
Для постановки ПЦР в реальном времени необходим амплификатор, обладающий способностью возбуждать и детектировать флуоресценцию на каждом цикле амплификации. Прибор состоит из трех блоков: амплификатора (термический блок), флуоресцентного детектора и компьютера с прилагаемым программным обеспечением.
Для выявления продуктов амплификации в режиме реального времени используют интеркалирующие красители (например, SybrGreen I) или специфические флуоресцентные зонды (например, система TaqMan). В первом варианте флуоресцентный краситель связывается с синтезируемой двухцепочечной ДНК с возникновением флуоресцентного свечения.
Во втором варианте используются ДНК-зонды, в состав которых введена флуоресцентная метка и гаситель флуоресценции. На стадии элонгации полимераза синтезирует комплементарную цепь ДНК и по достижении зонда расщепляет его благодаря наличию 5'-экзонуклеазной активности. Происходит разъединение флуоресцентной метки и гасителя, что приводит к появлению детектируемого свечения.
Используемые реагенты, оборудование, условия ПЦР и программу расчета указывают в частной фармакопейной статье.
Оценка результатов
Полученные результаты учитывают, если одновременные испытания положительных и отрицательных стандартных или контрольных образцов получены положительные и отрицательные ответы соответственно.
При необходимости определения нуклеиновой кислоты, для которой установлено предельно допустимое содержание ДНК, следует проводить сравнение с результатом ПЦР стандартного образца с соответствующей концентрацией.
Для количественного определения специфической нуклеиновой кислоты следует использовать метод ПЦР в реальном времени и стандартный образец, аттестованный в установленном порядке.
Обеспечение качества
Оборудование должно быть аттестовано в установленном порядке.
Методика на основе ПЦР для неколичественного определения должна быть охарактеризована по специфичности и аналитической чувствительности. Аналитическую чувствительность определяют как минимальное количество целевых последовательностей (ДНК/РНК) в единице объема образца, которое может быть обнаружено в 100% образцов при 10-кратном проведении анализа или в 95% образцов при 24-кратном проведении анализа. Количество ДНК/РНК может быть выражено в международных единицах или числом копий.
Методика для количественного определения должна быть охарактеризована по специфичности, диапазону линейности, правильности и прецизионности.
Для установления указанных характеристик при возможности должны использоваться соответствующие международные стандартные образцы, а также отраслевые стандартные образцы или стандартные образцы предприятия, аттестованные в установленном порядке.
Стандартные и контрольные образцы.
Используемые стандартные образцы должны быть аттестованы в установленном порядке, контрольные образцы - охарактеризованы по необходимым показателям.
При каждой постановке ПЦР необходимо предусмотреть использование следующих образцов:
- положительный стандартный и/или контрольный образец, содержащие определенное количество целевой последовательности, предназначенные для проведения всех этапов ПЦР;
- положительный контрольный образец, содержащий определенное количество целевой последовательности, предназначенный для оценки этапа амплификации;
- отрицательный контрольный образец, являющийся свободным от целевых последовательностей для контроля отсутствия ложноположительных результатов;
Если вы являетесь пользователем интернет-версии системы ГАРАНТ, вы можете открыть этот документ прямо сейчас или запросить по Горячей линии в системе.