Приложение N 3. Инструкция по бактериологическому контролю качества проведения противоэпидемических мероприятий в акушерских стационарах

Приложение N 3
к приказу Министерства здравоохранения СССР
от 28 декабря 1989 г. N 691

Инструкция
по бактериологическому контролю качества проведения противоэпидемических мероприятий в акушерских стационарах

1. Общие положения

1.1. Бактериологический контроль за качеством проведения противоэпидемического режима осуществляют санитарно-эпидемиологические, дезинфекционные станции и лечебно-профилактические учреждения.

1.2. В акушерских стационарах бактериологический контроль проводят санитарно-эпидемиологические и дезинфекционные станции, бактериологические лаборатории лечебных учреждений в порядке текущего надзора не менее 1 раза в квартал.

Внеочередной санитарно-бактериологический контроль проводят по эпидемическим показаниям, а также с целью оценки качества выполненных профилактических мероприятий после закрытия родильного дома.

1.3. Бактериологический контроль при текущем саннадзоре осуществляется в родильных залах, операционном блоке, процедурных, детских палатах и палатах интенсивной терапии, в комнатах сбора, пастеризации и хранения грудного молока, в палатах послеродового отделения.

1.4. Объектами исследования являются:

- воздушная среда;

- медицинский инструментарий;

- руки и одежда медперсонала;

- грудное молоко и питьевые растворы;

- лекарственные средства.

1.5. Ориентировочный перечень объектов, подлежащих бактериологическому контролю.

Родильный зал: польстер, кровать (металлические части) для рожениц; лоток, подготовленный к приему новорожденного; баллон и катетер для отсоса слизи у новорожденного; шланг вакуум-экстрактора, таз для мытья рук, щетки для мытья рук, набор первичной и вторичной обработки новорожденного (на стерильность), индивидуальный комплект для рожениц (на стерильность), комплект для акушерки (на стерильность), руки акушерки, фартук акушерки, шланг и маска наркозного аппарата, аппарат искусственной вентиляции легких, насадка и шланг кислородной подводки, пеленальный стол, весы, детская кроватка, матрац или гамачок, кран раковины и раковина, глазные капли, масло для обработки новорожденного, поверхность инструментального стола, полки шкафа для медикаментов и инструментов.

Палаты новорожденных: пеленальный стол, весы, металлические части детской кроватки, поверхность медицинского стола, матрац или гамачок, глазные пипетки, кран раковины для подмывания детей, раковины для подмывания детей (слив), кювез (внутренняя поверхность), градусники, зонды и баллоны для отсоса слизи, руки детской сестры, фартук детской сестры, масло для обработки новорожденных, детское белье, щетки для мытья рук, насадка и шланг кислородной подводки, молоко и питьевые растворы, стерильные ватные шарики и марлевые салфетки, глазные капли, каталки для перевоза детей.

Комната для вторичной обработки новорожденных: весы; клеенка детского пеленального столика, детская кровать, аппарат искусственной вентиляции легких, насадка и шланг кислородной подводки.

Предоперационная и операционная: тазы для обработки рук хирургов, чистые щетки для мытья рук, фартуки, кран раковины и раковина, каталка для перевозки больных, ветошь для уборки, полки, шкафы для медикаментов, операционный стол, рабочий стол анестезиологов, маска и шланг наркозного аппарата, шланг вакуум-насоса, шланг кислородной подводки, поверхность инструментальных столов; осветительная аппаратура; внутренняя поверхность холодильника, шовный материал, подготовленный для оперативных вмешательств (на стерильность), шприцы, иглы, стерильные растворы (на стерильность), операционное поле, руки хирурга после обработки; стерильные перчатки членов операционной бригады (на стерильность).

Комната сбора, пастеризации и хранения грудного молока: грудное молоко пастеризованное; руки медицинской сестры; рабочий стол для чистой посуды; внутренняя поверхность холодильника для хранения молока; емкость для сцеживания молока; молокоотсосы; ватные тампоны, марлевые салфетки для укупорки подготовленных бутылочек (на стерильность); воронки; соски, внутренняя поверхность кастрюли для пастеризации молока; стерильные бутылочки для грудного молока и питьевых растворов.

Послеродовая палата: клеенка или пеленка, используемая родильницей при кормлении новорожденного; комплект чистого постельного и нательного белья; емкость для сцеживания грудного молока; грудные железы и руки родильницы перед кормлением новорожденного.

Приемное отделение: клеенка на кушетке; руки акушерки; мочалки чистые; бритвы.

2. Методы санитарно-бактериологического контроля

2.1. Исследования микробной обсемененности воздуха

2.1.1. Бактериологические исследования воздуха предусматривают определение общего содержания микроорганизмов в 1 воздуха и определение содержания золотистого стафилококка в 1 воздуха.

2.1.2. Пробы воздуха отбирают аспирационным методом с помощью аппарата Кротова (прибор для бактериологического анализа воздуха, модель 818). Скорость протягивания воздуха - 25 л/мин. Количество пропущенного воздуха - 100 л для определения общего содержания микроорганизмов (4 мин) и 250 л для определения наличия золотистого стафилококка (10 мин).

Примечание: При наличии в лаборатории прибора ПАБ-1 (пробоотборник аэрозольный бактериологический) пробы воздуха на те же показатели отбирают с помощью этого аппарата.

2.1.3. Для определения общего содержания микроорганизмов в 1 воздуха отбор проводят на 2% питательный агар. Посевы инкубируют при 37°C в течение 24 часов, после чего подсчитывают количество выросших колоний и производят пересчет на 1 воздуха.

2.1.4. Для определения золотистого стафилококка отбор проб производят на желточно-солевой агар (ЖСА). Чашки с посевами инкубируют при 37°С в течение 24 часов и 24 часа при комнатной температуре. Подозрительные колонии подлежат дальнейшему исследованию.

2.1.5. Критерии оценки микробной обсемененности воздуха в родильных домах: (табл. 1).

Таблица 1

Место отбора проб	Условия работы	Допустимое общее количество КОЕ в 1 воздуха	Допустимое количество колоний золотистого стафилококка в 1 воздуха
Комнаты сбора и пастеризации грудного молока	во время работы	не выше 1000	не более 4
Детские палаты	подготовленные к приему детей	не выше 500	не должно быть
	во время работы	не выше 750	не более 4
Операционные и родильные комнаты	до начала работы	не выше 500	не должно быть
	во время работы	не выше 1000	не более 4
Палаты для недоношенных и травмированных детей	подготовленные к приему детей	не выше 500	не должно быть
	во время работы	не выше 750	не должно быть
Примечание: КОЕ - колониеобразующие единицы

2.2. Исследование микробной обсемененности предметов окружающей среды

2.2.1. Бактериологическое исследование микробной обсемененности предметов окружающей среды в акушерских стационарах при текущем саннадзоре предусматривает выявление микроорганизмов семейства Enterobacteriaceae, золотистого стафилококка и псевдомонас аеругиноза с чистых и бывших в употреблении предметов.

2.2.2. Отбор проб с поверхностей осуществляют методом смывов. Взятие смывов производят стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробирки с 5 мл стерильной 1% пептонной водой. Тампон увлажняют питательной средой, делают смыв с объекта и помещают в ту же пробирку, погружая в пептонную воду.

2.2.3. При контроле мелких предметов смывы отбирают с поверхности всего предмета; при контроле предметов с большой поверхностью смывы проводят с площади не менее 100 кв. см, тщательно протирая поверхность. Необходимо обращать внимание на места, труднодоступные для мытья и дезинфекции. Одним тампоном можно производить смыв с нескольких однородных мелких предметов.

2.2.4. Из каждой отобранной пробы производят посев непосредственно ватным тампоном на чашку Петри с желточно-солевым агаром; 0,5 смывной жидкости засевают в 5 мл бульона с 6,5% хлорида натрия для выделения золотистого стафилококка. Чашки с посевами на желточно-солевом агаре, засеянные пробирки с солевым бульоном и пептонной водой с ватными тампонами выдерживают в термостате при 37°С в течение 18-24 часов. Дальнейшее изучение проводят по схеме.

2.2.5. Схема бактериологического исследования на микроорганизмы семейства Enterobacteriaceae, Псевдомонас аеругиноза.

Для выявления Энтеробактерий и Псевдомонас аеругиноза посев производят из пробирок с 1% пептонной водой после инкубации при 37°С в течение 18-20 часов на среду Эндо. Посевы на среде Эндо выдерживают при 37°С 18-24 часа. Чашки с посевами на среде Эндо просматривают. При наличии на среде Эндо колоний, характерных для условно-патогенных энтеробактерий - красных с металлическим блеском или без него, розовых с темным центром, розовых, слизистых, бледно-розовых, готовят мазки, окрашивают по Граму и микроскопируют (окраску по Граму можно заменить пробой с 3% водным раствором КОН). Лактозоотрицательные колонии подвергают дальнейшему изучению для установления их возможной принадлежности к патогенным энтеробактериям и псевдомонас аеругиноза.

Идентификацию энтеробактерий проводят в соответствии с "Методическими указаниями по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями" Минздрава СССР N 04-723/3 от 17.12.84 г.

Псевдомонас аеругиноза на среде Эндо образует колонии с ровными или слегка волнистыми краями, гладкой блестящей поверхностью с характерным запахом и пигментом. Запах и пигмент могут сильно варьировать или вообще отсутствовать. Для идентификации отбирают со среды Эндо не менее 2-х колоний и засевают на ряд дифференциально-диагностических сред (табл. 2).

Таблица 2

Основные межвидовые биохимические свойства бактерий рода Псевдомонас

Тесты	Подвижность	О/Ф тест	Оксидаза	Пиоцианин	Рост при 42°С	Желатиназа	Нитратаза	Лизин декарбоксилаза
Вид псевдомонад
P. aeruginosa	+	+/-	-	+	+	+	+	-
P. fluorescens	+	+/-	-	-	-	+	-	-
P. putida	+	+/-	-	-	-	-	-	-
P. cepacia	+	+/-	+	-		-	-	+
P. stutzezi	+	+/-	+	-		-	+	-
P. maltophilia	+	+/-	-	-		+	-	-

Псевдомонас аеругиноза - грамотрицательные, подвижные, оксидазоположительные палочки, оксидирующие, но не ферментирующие глюкозу, образующие нитратазу, пиоцианин на среде Кинг А, дающие рост при 42°С.

При целенаправленных исследованиях на Псевдомонас аеругиноза допускается высев с 1% пептонной воды на среду с ЦПХ-агаром Дагестанского НИИ питательных сред.

Дальнейшую идентификацию псевдомонад и приготовление питательных сред проводят согласно "Методических рекомендаций по определению грамотрицательных потенциально-патогенных бактерий - возбудителей внутрибольничных инфекций" Минздрава РСФСР от 03.06.86 г.

2.2.6. Схема бактериологического исследования на стафилококк.

Для выявления золотистого стафилококка делают посев на одну из сред: желточно-солевой, молочно-солевой или молочно-желточно-солевой агар. В качестве среды накопления используют бульон с 6,5% натрия хлорида, разлитый в пробирки по 5,0 мл, в который засевают по 0,5 мл смывной жидкости. Засеянные пробирки инкубируют при 37°С в течение 20-24 часов, после чего производят посев на питательный агар или молочный агар.

Засеянные плотные питательные среды выдерживают в термостате при 37°С в течение 2 суток или одни сутки в термостате и дополнительно 24 часа на свету при комнатной температуре. Затем проводят просмотр чашек, фиксируя в журнале характер и массивность роста колоний.

На вышеуказанных средах стафилококк растет в виде круглых, блестящих, маслянистых колоний, часто пигментированных. На среде, содержащей желток, золотистый стафилококк, выделенный от человека, в 60-70% случаев образует радужный венчик вокруг колоний.

С плотных солевых сред на скошенный питательный или молочный агар снимают, в первую очередь, колонии стафилококков, образующие радужный венчик и пигментирование колонии. При отсутствии на чашках пигментированных колоний и колоний с положительной лецитовителлазной активностью для исследования снимают беспигментные колонии и колонии с отсутствием лецитовителлазной активности, похожие по морфологии на стафилококк. Следует отбирать не менее двух колоний различного вида. Пробирки с посевами помещают в термостат при 37°С на 18-20 часов. После суточной инкубации, у выделенных штаммов проверяют морфологию, тинкториальные свойства (окраску по Граму) и наличие плазмокоагулирующей активности и хлопьеобразующего фактора.

Окраску по Граму проводят общепринятым методом. Под микроскопом стафилококки имеют вид фиолетово-синих кокков, располагающихся гроздьями или небольшими кучками.

Если культура обладает плазмокоагулирующей активностью, пигментом, хлопьеобразующим фактором и в 70-75% лецитовителлазной активностью, типичная по морфологии - она относится к виду S. aureus.

Если культура обладает типичной морфологией, плазмокоагулирующей активностью при отсутствии пигмента и хлопьеобразования, то принадлежность к виду коагулазоположительных стафилококков определяют по таблице 3. Для идентификации используют 2-3 доступных теста помимо реакции плазмокоагуляции.

Таблица 3

Тесты	Коагулаза	Пигмент	Реакция Фогес-Проскауера	Продукция кислоты в аэробных условиях из:		Хлопьеобразование	Гемолиз
Вид стафилококка
				Маннита	Мальтозы
S. aureus	+	+	+	+	+	+	+
S. intermedius	+	-	-				+
S. hyicus	+	-	-	-	-	-	-
Примечание: - от 11% до 89% положительных результатов.

Выделенные культуры золотистого стафилококка подлежат обязательному фаготипированию.

Если культура коагулазоотрицательная, типична по морфологии для стафилококков, то принадлежность ее к коагулазонегативным стафилококкам определяют по табл. 4. Для идентификации используют 2-3 доступных теста помимо реакции плазмокоагуляции.

Таблица 4

Дифференциация коагулазонегативных видов стафилококков

Тесты	Коагулаза	Фосфатаза	Аэробное расщепление
Виды стафилококков
			Маннит	Манноза	Трегалоза	Галактоза
S. aureus	+	+	+	+	-	+
S. epidermidis	-	+	-	+	-
S. warneri	-	-	+	-	+
S. haemolyticus	-	-		-	+
S. hominis	-	-	-	-
S. saprophyticus	-	-	+	-	+	-
Примечание: от 11% до 89% положительных результатов.

3.2.7. Обследование родильных домов по эпидемическим показаниям.

При обследовании родильных домов по эпидемическим показаниям проводят отбор проб совместно с эпидемиологом.

При обследовании по эпидемическим показаниям смывы с объектов и предметов проводят как с чистых, так и бывших в употреблении.

Учитывая, что внутрибольничные инфекции в акушерских стационарах могут быть вызваны различными микроорганизмами, при обследовании по эпидемическим показаниям, в зависимости от конкретного случая, бактериологические исследования проводят не только на вышеприведенные микроорганизмы (раздел 2), но и на другие бактерии, вызвавшие вспышку (эпидермальный стафилококк, псевдомонады по п. 2.2.5. и 2.2.6. и др.).

2.2.8. Определение чувствительности микроорганизмов к антибиотикам.

Определение чувствительности микроорганизмов к антибиотикам проводят при текущем надзоре (выборочно, при повторных случаях выявления микроорганизмов) и по эпидемическим показаниям.

Определение чувствительности, выделенных штаммов к антибиотикам изучают в соответствии с "Методическими указаниями по определению чувствительности микроорганизмов к антибиотикам методом их диффузии в агар с использованием дисков" Минздрава СССР N 2675-83 от 10.03.83 г.

2.3. Исследование грудного молока, растворов для питья новорожденных, лекарственных форм

2.3.1. Исследование грудного молока, подвергнутого пастеризации, растворов для питья новорожденных проводят с целью установления общей бактериальной обсемененности, титра бактерий группы кишечных палочек, золотистого стафилококка.

Для исследования берут пробы грудного молока и растворов для питья новорожденных как из комнаты для сбора, пастеризации и хранения грудного молока, так и непосредственно из детских палат.

Для определения титра бактерий группы кишечных палочек в грудном молоке и растворах засевают их на среде Кесслера в следующих объемах: 10,0 , 1,0 , и по 1,0 из разведений 1:10 и 1:100. Посевы инкубируют при температуре 37°С в течение 18-24 часов, после чего проводят высев на среду Эндо. При росте характерных колоний для бактерий группы кишечных палочек осуществляют постановку 2-ой бродильной пробы на глюкозу с поплавком.

Среду выдерживают 24 часа при 37°С. При выявлении бактерий группы кишечной палочки проводят идентификацию выделенных культур.

Для определения общего микробного числа в растворах засевают параллельно на две чашки Петри по 1,0 , при исследовании грудного молока засевают по 1,0 из разведений 1:10 на две чашки. Посев производят глубинным методом. После инкубации посевов при температуре 30° в течение 48 часов производят подсчет выросших колоний.

2.3.2. Исследование масла, используемого для обработки кожи новорожденного.

Исследование масла проводят на наличие золотистого стафилококка и бактерий группы кишечных палочек. Посев проводят в 5 6,5% солевого бульона в количестве 0,5 для определения золотистого стафилококка. Дальнейший ход исследований по п. 2.2.6.

На наличие бактерий группы кишечных палочек посев проводят в количестве 1 на 9 среды Кесслера, дальнейший ход исследования по п. 2.3.1.

2.3.3. Лекарственные формы.

Различные лекарственные формы исследуются в соответствии с "Методическими указаниями по микробиологическому контролю в аптеках" N 3182-81 от 29.12.84 г.

ГАРАНТ:

По-видимому, в тексте предыдущего абзаца допущена опечатка. Номер названных Методических указаний следует читать как "3182-84"

Кроме вышеперечисленного ориентировочного перечня предметов, подлежащих бактериологическому контролю, целесообразно проводить исследование (выборочно) посуды пищеблока и буфетов - раздаточных отделений.

3. Исследование отделяемого верхних дыхательных путей

3.1. Обязательному бактериологическому исследованию подвергают слизь передних отделов носа; исследование слизи из зева проводят только по показаниям, прежде всего при наличии воспалительных процессов в зеве.

3.2. Забор материала из передних отделов носа осуществляют одним стерильным ватным тампоном из обеих половин носа. Сбор материала из зева производят с поверхности миндалин стерильным ватным тампоном. Материал из зева собирают натощак или не ранее чем через 2-3 часа после приема пищи.

3.3. Посев исследуемого материала на питательные среды проводят не позже чем через 2 часа после его забора.

3.4. Для первичного посева используют одну из питательных сред: желточно-солевой, молочно-солевой, молочно-желточно-солевой агар.

3.5. Посев проводят одним из предлагаемых способов.

3.5.1. Посев проводят непосредственно тампоном, которым забирали материал. Тампон следует многократно поворачивать, чтобы перенести на питательную среду максимальное количество взятого материала.

3.5.2. Взятый тампоном материал в лаборатории помещают в пробирку с 5,0 мл стерильного физиологического раствора. Тампон ополаскивают в жидкости встряхиванием пробирки в течение 10 минут. Жидкость многократно перемешивают пипеткой, наносят 0,1 мл на одну из вышеуказанных питательных сред и тщательно растирают шпателем.

4. Определение массивности обсеменения верхних дыхательных путей

4.1. Обсемененность, выражающаяся показателем и более колониеобразующих единиц (КОЕ), снимаемых на тампон, является показателем высокой обсемененности, при которой происходит выделение возбудителя во внешнюю среду при спокойном дыхании.

4.2. Для определения массивности обсеменения верхних дыхательных путей стафилококками при прямом методе посева тампоном, можно пользоваться оценкой роста колоний на чашках, обозначая в крестах

+ + + +	сливной рост*
+ + +	сплошной рост изолированных колоний
+ +	значительный рост (до 100 колоний)
+	единичные колонии (10-25)

Примечание: * - сливной и сплошной рост соответствует, как правило, массивности обсеменения КОЕ, снимаемых на тампон.

4.3. Для определения массивности обсеменения верхних дыхательных путей стафилококками при посеве 0,1 мл смывной жидкости подсчитывают число выросших на чашке однородных колоний, идентичных по морфологии и пигменту, затем подсчитывают количество КОЕ, снимаемых на тампон.

Пример расчета: на чашке выросло 15 колоний, значит в 0,1 мл содержалось 15 КОЕ, во всем объеме смыва будет 15 х 10 х 5 = 750 или КОЕ.

Схему бактериологического исследования см. в разделе 2.2.6.

5. Питательные среды и тесты для выделения и идентификации стафилококков

5.1. Реакция плазмокоагуляции ставится в соответствии с "Наставлением по применению плазмы кроличьей", выпускаемой предприятиями по производству бактерийных препаратов.

5.2. Реакция хлопьеобразования.

На предметное стекло наносят каплю исследуемой культуры. Параллельно для контроля культуру растирают также в капле физиологического раствора. При наличии в контроле равномерной мути, а в плазме - хлопьев, реакцию считают положительной. Хлопьеобразование можно также наблюдать при постановке реакции коагуляции.

5.3. Фосфотазная активность.

К 2% питательному агару добавляют паранитрофенолфосфат (0,05%). Среду разливают в чашки, подсушивают и исследуемую культуру засевают бляшками. Реакция считается положительной при появлении желтого окрашивания среды вокруг колонии через 24 часа инкубации при 37°С. Вместо паранитрофенолфосфата можно использовать фенолфталеинфосфат (0,05%). Через 24 часа инкубации при 37°С выросшие культуры обрабатывают парами аммиака. Реакция считается положительной при окрашивании выросших колоний в малиновый цвет.

5.4. Расщепление углеводов в аэробных условиях (маннита, мальтозы, трегалозы, галактозы, маннозы).

Посевы испытуемых культур производят на поверхность среды бляшками или небольшими полосами. Среда имеет следующий состав: 2% питательный агар - 100 мл, углевод (химически чистый) - 1%, 1,6% бромтимолблау (спиртовый раствор) - 0,3 мл. Среду стерилизуют и разливают в стерильные чашки Петри. Готовая среда должна быть сине-зеленоватого цвета (рН - 7,2-7,4). Всего на чашку засевают не более 6 культур.

Учет результатов через 24 часа после инкубации при 37°С. Пожелтение среды вокруг полосы свидетельствует о ферментации углевода. Желтое окрашивание самой полосы расценивают как слабая или сомнительная реакция (+). Это пожелтение не следует путать с пигментообразованием культуры. Реакцию проще учитывать, подложив под чашку белый лист бумаги.

6. Бактериологический контроль эффективности обработки кожи операционного поля и рук хирургов

6.1. Смывы с кожи операционного поля и рук хирургов производят стерильными марлевыми салфетками размером 5х5 см, смоченными в растворе нейтрализатора или физиологическом растворе. Марлевой салфеткой тщательно протирают ладони, околоногтевые и межпальцевые пространства обеих рук. После забора проб марлевую салфетку помещают в широкогорлые пробирки или колбы с раствором нейтрализатора (воды или физиологического раствора) и стеклянными бусами встряхивают в течение 10 минут, производят отмыв марлевой салфетки. Отмывную жидкость засевают по 0,5 мл в 2 пробирки с 5 мл тиогликолевой среды, марлевую салфетку помещают в пробирку с тиогликолевой средой. Посевы инкубируют при температуре 37°С в течение 48 часов.

6.2. Учет результатов.

Обработка кожи операционного поля и рук хирургов эффективна при отсутствии роста микроорганизмов в питательной среде.

7. Бактериологический контроль качества дезинфекции

В акушерских стационарах об эффективности дезинфекции судят по отсутствию в смывах золотистого стафилококка, энтеробактерий, синегнойной палочки, а также патогенных микроорганизмов.

Отбор смывов с предметов после дезинфекции производят стерильным ватным тампоном на палочке (проволоке), вставленной в пробирку, или марлевой салфеткой 5x5 см, простерилизованной в бумажном пакете или чашке Петри. Пробирки заполняются 1% раствором пептонной воды. После смыва тампон помещают на 10-15 минут в раствор нейтрализатора. Нейтрализатор - это вещество, которое устраняет действие дезинфицирующего агента на микробную клетку, что позволяет микроорганизмам, сохранившим жизнеспособность, развиваться в питательных средах. Для нейтрализации дезинфицирующих агентов используют следующие химические вещества:

- тиосульфат натрия (0,5% раствор при выделении вегетативных форм микроорганизмов и 1% - спорообразующих) при использовании для дезинфекции хлоросодержащих, перекисных, йодсодержащих препаратов; препарат может быть добавлен в 1% р-р пептонной воды;

- сульфонол с молоком (на 1 л раствора используют 200 г сульфонола, 100 мл обезжиренного молока и 700 мл дистиллированной воды) при использовании четвертичных аммониевых соединений;

- мыло банное (0,5% раствор) - при использовании препаратов на основе анионных поверхностно-активных веществ, гибитана;

- водопроводная вода - при использовании препаратов на основе фенола, глютарового альдегида;

- аммиак (0,5% раствор) - при использовании формальдегида или препаратов на его основе.

В качестве нейтрализатора используют стерильные растворы указанных веществ.

По истечении необходимого для нейтрализации дезинфицирующего агента времени тампон (салфетку) переносят в пробирку с питательной средой для дальнейшего исследования (п.п. 2.2.5.-2.2.6.).

8. Бактериологический контроль качества обработки кожи рук

Контроль качества обработки кожи рук осуществляют методом смыва. Смыв отбирают ватным тампоном, который предварительно увлажняют в 1% р-ре пептонной воды и затем протирают поверхность ладони. После этого тампон помещают в пробирку с 1% р-ром пептонной воды. При обработке рук дезинфицирующим препаратом тампон первоначально помещают в нейтрализатор на 10-15 минут и только после этого - в питательную среду. Кожа рук считается обеззараженной, если в отобранных смывах не регистрируется рост золотистого стафилококка, энтеробактерий, синегнойной палочки.

Бактериологический контроль стерильности изделий медицинского назначения в акушерских стационарах осуществляется в соответствии с приказом Минздрава СССР N 60 от 17.01.79 г. "О мерах по дальнейшему укреплению и развитию дезинфекционного дела"*.

Начальник Главного санитарно-профилактического управления

В.И. Чибураев

Начальник Главного эпидемиологического управления

М.И. Наркевич

______________________________

* В настоящее время для контроля стерильности используют две среды: тиогликолевую и среду Сабуро. Посевы в тиогликолевую среду выдерживают в термостате при температуре 30-35°С, в среду Сабуро - при температуре 20-25°С.