Введение. Причиной пирогенности дистиллированной воды, предназначенной для изготовления инъекционных растворов, а также самих инъекционных растворов является контаминация их микроорганизмами и продуктами распада. Стерилизация освобождает растворы от наличия жизнеспособных микроорганизмов, но в растворах остаются мертвые клетки и продукты их распада, обладающие пирогенными свойствами. Попадая с различными лекарственными веществами, вводимыми в организм больного человека, пирогены могут вызывать осложнения в виде пирогенных реакций.
У человека различают три степени пирогенной реакции: легкую, среднюю и тяжелую, каждая из которых характеризуется определенными симптомами. Тяжелой степени пирогенной реакции соответствует сильный озноб, рвота, одышка, температура при этом достигает 40°С. Симптомы реакции носят затяжной характер и прекращаются лишь через сутки. Возможен летальный исход после введения пирогенных лекарственных средств, вызвавших тяжелую реакцию у больных.
При внутривенном введении бактериальные пирогены обладают значительно большей активностью, чем при подкожном или внутримышечном введении. В связи с этим особенно опасны инфузионные растворы, загрязненные бактериальными пирогенами, так как они вводятся больному человеку внутривенно в больших объемах.
В нашей стране подавляющее большинство (в настоящее время около 96% от общего количества) инфузионных растворов изготовляется в аптеках лечебно-профилактических учреждений. Испытание на пирогенность, предусмотренное ГФ-XI, эти растворы не проходят. Поэтому в методические указания в первую очередь вводится методика обнаружения и нормы содержания пирогенобразующих микроорганизмов до стерилизации для инфузионных растворов аптечного изготовления.
Описание метода:
Формула метода. Впервые предлагается проводить оценку пирогенности ряда растворов для инъекций и дистиллированной воды, предназначенной для их изготовления, по количеству присутствующих в них до стерилизации живых грамотрицательных (пирогенобразующих) микроорганизмов. Идентификацию пирогенобразующих микроорганизмов проводят по реакции образования геля при их взаимодействии с 3% раствором гидроксида калия.
Материально-техническое обеспечение метода. Испытание лекарственных препаратов на наличие в них микроорганизмов проводят в асептических условиях согласно требованиям ГФ-XI. Отбор проб исследуемых растворов для испытаний, применяемая питательная среда для выращивания микроорганизмов, условия инкубирования посевов (температура и сроки выдерживания в термостате) также соответствуют требованиям ГФ-XI.
Методика обнаружения и нормы содержания общего количества и пирогенобразующих микроорганизмов вводится на растворы для инъекций аптечного изготовления, на которые имеется нормативно-техническая документация в виде методических указаний.
Описание метода. Бактериологический контроль лекарственных растворов для инъекций (выборочно) и дистиллированной воды, используемой для их изготовления, проводят не реже двух раз в квартал.
Отбор и приготовление проб. От каждой серии исследуемого раствора отбирают среднюю пробу не менее 50 мл, состоящую из равных разовых проб, взятых минимум из 10 разных флаконов.
Методика обнаружения пирогенобразующих микроорганизмов в растворах для инъекций и дистиллированной воде, предназначенной для их изготовления
1 мл исследуемого образца, взятого перед стерилизацией, засевают по 0,5 мл на поверхность двух чашек Петри с питательной средой N I (ГФ XI) и термостатируют в течение 5 суток при температуре 30-35°С. На предметное стекло пипеткой наносят капли 3% раствора гидроксида калия, одна капля служит контролем, а в другие петлей вносят каждый вид выросших колоний микроорганизмов и тщательно перемешивают. Если в течение 60 секунд происходит образование желеобразной массы, суспензия тянется за петлей, образуя нити, то исследуемый раствор содержит пирогенобразующие микроорганизмы. Если образования геля не происходит, раствор остается гомогенным, то в исследуемом растворе отсутствуют пирогенобразующие микроорганизмы.
Разъяснение к методике.
Пирогенную реакцию в подавляющем большинстве случаев вызывают грамотрицательные микроорганизмы, в составе клеточной оболочки которых имеются липополисахариды. Грамположительные микроорганизмы, как правило, не вызывают пирогенную реакцию - их пирогенная активность в 10000-100000 раз слабее, чем у грамотрицательных микроорганизмов.
При установлении нормативов предельного содержания микроорганизмов в дистиллированной воде, предназначенной для изготовления инъекционных растворов и растворах для инъекций до стерилизации, была учтена избирательная идентификация пирогенобразующих микроорганизмов.
Нормативы предельно допустимого содержания непатогенных микроорганизмов в дистиллированной воде и растворах для инъекций
N/пп |
Наименование |
Предельно допустимое содержание микроорганизмов в мл |
1. |
Дистиллированная вода, используемая для изготовления инъекционных растворов |
пирогенобразующих - 5 общее количество 10-15 |
2. |
Растворы для инъекций до стерилизации не позднее 3 часов после изготовления: |
|
2.1. |
глюкозы 5%, 10%, 25% и 40% |
пирогенобразующих - 10 общее количество - 50 |
2.2. |
натрия хлорида 0,9% |
|
2.3. |
натрия гидрокарбоната 4% |
|
2.4. |
солевой раствор с глюкозой состава: калия хлорида 2,0 кальция хлорида 0,4 глюкозы 100,0 воды для инъекций до 1 л |
|
2.5. |
Рингера |
|
2.6. |
Рингера-Локка |
|
2.7. |
Квартасоль |
|
2.8. |
Новокаина 0,25%, 0,5%, 1% и и 2% |
пирогенобразующих 30-40 общее количество - 100 |
Примечание: при внутривенном введении взрослым растворов глюкозы, 0,9% раствора натрия хлорида, 4% раствора натрия гидрокарбоната, солевого раствора, с глюкозой, растворов Рингера, Рингера-Локка и Квартасоль в объеме не превышающем 100 л допустимым является содержание не более 30-40 пирогенобразующих микроорганизмов в 1 мл, общее количество не должно превышать 100 в 1 мл.
При разработке методики оценки пирогенности растворов по количеству присутствующих в них живых грамотрицательных микроорганизмов до стерилизации учитывались следующие факторы:
1. Ряд лекарственных препаратов влияет на пирогенную активность микроорганизмов. Одни лекарственные вещества способны активизировать действие бактериальных пирогенов, другие, наоборот, значительно ослаблять, поэтому в каждом конкретном случае проводились исследования по изучению пирогенности исследуемых растворов, содержащих грамотрицательные микроорганизмы.
2. Кроме живых микроорганизмов, пирогенную реакцию вызывают мертвые микроорганизмы и продукты их распада, содержащие термостабильный липополисахарид. Ввиду чего изучалось влияние выживаемости микроорганизмов и возможного накопления липополисахаридов на пирогенность исследуемых растворов.
3. Способность пирогенов утрачивать активность при хранении зависит от среды, в которой они присутствуют, поэтому важное значение имеет изучение изменения пирогенности исследуемых растворов, содержащих мертвые микроорганизмы.
4. При установлении предельно допустимого количества пирогенобразующих микроорганизмов в инфузионных растворах до стерилизации учитывалось, что официальное биологическое испытание на кроликах не гарантирует надежность результатов при контроле на пирогенность инфузионных растворов. Это связано с тем, что положение о том, что при испытании на пирогенность доза препарата на 1 кг массы кролика должна составлять 1/10-1/20 максимальной, применяемой в клинике, не соблюдается. Доза препарата при испытании его на пирогенность на кроликах, считая на 1 кг массы животного, может быть меньше суточной дозы для человека не более чем в 10-20 раз. На практике для инфузионных растворов, которые обычно вводятся людям в больших количествах, дозы для кролика и человека различаются в 200-300 раз. При таких больших различиях между дозами для кролика и человека проведение испытания на пирогенность с использованием указанных доз представляется в значительной степени лишенным смысла. Вышеуказанное было учтено при установлении предельно допустимого содержания пирогенобразующих микроорганизмов в инъекционных растворах до стерилизации. При сравнении предлагаемой методики с результатами биологического испытания на кроликах необходимо иметь в виду, что при наличии в указанных объектах до стерилизации живых пирогенобразующих микроорганизмов в количестве до 50 в 1 мл пирогенная реакция не наблюдается. При содержании 50-100 микроорганизмов в 1 мл пирогенная реакция у кроликов наблюдается не всегда, однако это содержание уже опасно. При наличии пирогенобразующих микроорганизмов более 100 в 1 мл наблюдается выраженная пирогенная реакция.
Пирогены теряют активность при хранении, поэтому при сравнении двух методов желательно проводить анализ с интервалом 2-3 дня.
Эффективность использования метода. На протяжении многих лет растворы для инъекций аптечного изготовления не испытываются на пирогенность из-за недоступности для контрольно-аналитических лабораторий дорогостоящего официального биологического испытания на кроликах. Предлагаемая методика проста в исполнении, доступна, применение ее на практике позволит значительно повысить качество инъекционных растворов изготовляемых в аптеках.
Директор НИИФ |
Л.В. Мошкова |
Зав. лабораторией биологических и физико- |
Н.Н. Дементьева |
Ст. научн. сотр. |
Л.Е. Шедрина |
Зам. министра |
А.Е. Вилькен |
Согласовано:
Начальник Управления |
Р.У. Хабриев |
21 января 1997 г.
Согласовано:
Начальник Управления |
В.И. Сергиенко |
21 января 1997 г.
Если вы являетесь пользователем интернет-версии системы ГАРАНТ, вы можете открыть этот документ прямо сейчас или запросить по Горячей линии в системе.
Методические указания N 97/120 "Исследование микрофлоры в инъекционных растворах до стерилизации" (утв. Минздравом РФ 17 января 1997 г.)
Текст методических указаний приводится по изданию Министерства здравоохранения Российской Федерации (Москва, 1997 г.)