Методические рекомендации "Санитарно-микробиологические исследования объектов окружающей среды в связи с производством и применением бактериальных инсектицидов на основе bacillus thuringiensis" (утв. Заместителем Главного государственного санитарного врача СССР 17 июля 1979 г. N 2037-79)

II. Санитарно-микробиологическое исследование объектов окружающей среды

 

Микроорганизмы Bac. thuringiensis хорошо растут на обычных питательных средах. Однако проведение широких исследований по санитарно-микробиологическому контролю за производством и применением бактериальных инсектицидов на их основе потребовало разработки новых питательных сред, позволяющих выделить данные микроорганизмы из сильно загрязненных микрофлорой объектов, например из почвы и продуктов питания. Предложен ряд питательных сред, характеристика которых по основным показателям представлена в таблице 1.

Из представленных сред лишь модифицированная среда Пивоварова и разработанные нами казеин-полимиксиновый агар и казеин-полимиксиновый агар с ТТХ, могут быть использованы для исследования исключительно всех объектов. Для исследования продуктов питания рекомендуются модифицированная среда Мосселя, среда Донован, и разработанный нами казеин-полимиксиновый агар с феноловым красным. Что же касается других сред, представленных в таблице, то использовать их можно лишь при отсутствии компонентов, необходимых для приготовления предлагаемых сред, но в этом случае необходимо предварительно перед посевом прогреть исследуемый материал.

Отбор проб объектов внешней среды производится в зависимости от целей исследования в различные сроки. Подготовка проб для бактериологического анализа осуществляется по общепринятым методикам (отбор растительных продуктов производить согласно инструкций, изложенных в методических указаниях N 286-69 утвержденными МЗ СССР 5 мая 1969 г., ГОСТов 1724-67, 1725-68 и т. д.; отбор готовых продуктов производить согласно ГОСТов 8756.0-70, 12001-66, 12231-66 и т. д.; отбор проб воды производить согласно ГОСТов 18963-73 и 2874-73; отбор проб почвы производить в соответствии с методическими указаниями N 1446-76, утвержденными МЗ СССР 4 августа 1976 г., отбор проб воздуха производить серийным прибором ПОВ-1 (прибор для отбора проб воздуха) в стерильный 0,85 процентный раствор хлористого натрия.

Таблица 1

 

Характеристика основных сред для выделения Bac. thuringiensis

 

Наименование среды	Для каких ис- следований предназначены	Морфология колоний	Время роста в часах при t 30° С
Питательный агар Желточный агар Среда Моссе- ля (модифи- кация) Среда Доно- ван Среда Ю.П. Пивоварова с ТТХ (модифи- кация) Казеин-поли- миксиновый агар Казеин-поли- миксиновый агар с ТТХ Казеин-поли- миксиновый агар с фено- ловым крас- ным	вода, воздух, продукты пи- тания почва, воздух продукты пи- тания, вода продукты пи- тания продукты пи- тания, почва, вода, воздух продукты пи- тания, почва, вода, воздух продукты пи- тания, почва, вода, воздух продукты пи- тания, вода	Крупные серые распластанные колонии с изрезанными краями, расположенные на поверхности среды без врастания в нее Крупные серо-белые распластанные колонии со слегка изрезанными края- ми, окруженные зоной белого коагу- лята Крупные колонии розово-белого цве- та, окруженные зоной коагулята, среда бесцветная или слабо-розовой окраски Крупные серо-белые распластанные колонии со слегка изрезанными края- ми, окруженные зоной белого коагу- лята Мелкие красно-рубиновые колонии на фоне зоны белого коагулята, в пер- вые сутки роста округлые, затем распластанные Крупные серо-белые распластанные колонии на фоне зоны просветления Мелкие красно-рубиновые колонии на фоне зоны просветления, крупные - на 2-е сутки Крупные розово-белые колонии, окру- женные зоной просветления, подле- жащая среда розового цвета.	18 - 24 18 - 24 18 - 24 18 - 24 24 - 48 18 - 24 24 - 48 18 - 24

 

В зависимости от предполагаемого загрязнения делают стерильно в 0,85% растворе хлористого натрия посевные разведения. Полученные разведения выдерживают при 80 - 85° С в течение 15 - 20 минут для освобождения от посторонней негативной микрофлоры. В случае исследования продуктов питания, подвергнувшихся кулинарной обработке, пастеризацию производить нельзя, т.к. Bac. thuringiensis находится в негативной форме, вследствие его размножения.

Первый этап. Производится посев разведений исследуемого материала на агаризованные питательные среды согласно данным таблицы 2. Из каждого разведения делают 2 - 5 параллельных посевов. После равномерного распределения посевного материала посредством втирания стерильным шпателем чашки с посевом инкубируют при температуре 30 - 32° С. Срок инкубации - в зависимости от используемой среды (табл. 1).

Второй этап. Просматривают выросшие колонии. Морфологические признаки колоний Bac. thuringiensis на различных агаризованных питательных средах приведены в таблице 1. На данном этапе можно дать предварительный количественный учет микроорганизмов Bac. thuringiensis по количеству выросших на чашках типичных колоний с пересчетом на засевавшиеся на данную чашку разведения исследовавшегося материала.

Третий этап. Определяют окончательную принадлежность выделенных микроорганизмов к группе Bac. thuringiensis. Подозрительные колонии (морфология колоний Bac. thuringiensis приведена в таблице 1) пересевают на косой столбик мясо-пептонного агара и инкубируют сутки при 30° С. Идентификация Bac. thuringiensis производится на основании наличия подвижности (в висячей капле), наличия кристаллов и спор, положительной протеолитической активности (разжижение желатина и гидролиз казеина), положительной реакции на лецитиназу (по наличию зоны коагулята на средах с желтком) и положительной реакции на ацетоин (реакция Фогес-Проскауэра). В качестве дополнительных тестов изучаются уреазная активность, гидролиз крахмала, образование эскулитина и ферментацию сахаров и спиртов на средах Гисса (сахароза, салицин, манноза, целобиоза). Могут быть использованы также и серологические реакции, в частности реакции агглютинации по II-антигену. Характеристику выделенных культур, сопоставляют с признаками разновидностей Bac. thuringiensis, представленных в таблице 3. В случае необходимости дифференциации Bac. thuringiensis от других аэробных спорообразующих микроорганизмов используется разработанный нами код-определитель аэробных бацилл (схема 2), составленный в соответствии с определителем Берджи (1974). В данном коде использованы кардинальные признаки отдельных микроорганизмов этого рода.

 

Таблица 2

 

Посев материала при исследовании на Bac. thuringiensis

 

Объект исследования	Питательные среды	Разведения материала и посевная доза в мл
		10 (1)	10 (2)	10 (3)	10 (4)	10 (5)	10 (6)	10 (7)
Продукты питания, вода Почва Воздух	Среда Пивоварова с ТТХ (модификация), среда Мосселя (модификация), среда Донован, питате- льный агар, казеин-по- лимиксиновый агар, ка- зеин-полимиксиновый агар ТТХ, казеин-поли- миксиновый агар с фено- ловым красным Желточный агар, пита- тельный агар, среда Пи- воварова с ТТХ, казеин- полимиксиновый агар, казеин-полимиксиновый агар с ТТХ Желточный агар, питате- льный агар, среда Пиво- варова с ТТХ, Казеин- полимиксиновый агар, казеин-полимиксиновый агар с ТТХ.	- - -	0,1 0,1 -	0,1 0,1 0,1	0,1 0,1 0,1	0,1 0,1 0,1	0,1 0,1 0,1	0,1 - 0,1

III. Определение основных свойств Bac. thuringiensis

 

Тест подвижности. Каплю 18-ти часовой бульонной культуры микроскопируют в темном поле или фазовоконтрастным методом - отмечено быстрое перемещение бактерий Bac. thuringiensis в поле зрения.

Образование ацетоина (реакция Фогес-Проскауэра). Исследуемую культуру засевают на глюкозо-фосфатный бульон Кларка. Инкубируют 24 часа при температуре 30 - 32° С. Затем к 1 мл культуры добавляют 0,6 мл альфа-нафтола (6% раствор в абсолютном спирте) и 0,2 мл 40% раствора едкого калия (КОН). Пробирки хорошо встряхивают и помещают на 1 час в термостат. При положительной реакции наступает розовое или рубиново-красное окрашивание среды вследствие образования ацетоина.

Продуцирование лецитиназы. Исследуемую культуру засевают на плотную питательную среду с яичным желтком. Инкубируют 18 - 24 часа при температуре 30 - 32° С. Зона побеления вокруг колоний на плотной среде свидетельствует о положительной реакции.

Образование эскулитина. Исследуемую культуру засевают точечным посевом на эскулиновый агар. Инкубируют 18 - 24 часа при температуре 30 - 32° С. В случае положительной реакции наблюдается зона почернения вокруг колоний.

Расщепление углеводов. Для изучения сахаролитической активности изучаемых культур засевают на среды Гисса (сахароза, салиции, целлобиоза, манноза). Инкубируют при температуре 30 - 32° С 18 - 24 часа. При положительной реакции цвет среды изменяется.

Гидролиз крахмала. Исследуемую культуру засевают точечным посевом на агаризованную среду с крахмалом. Инкубируют при температуре 30 - 32° С 18 - 24 часа. Зоны гидролиза проявляются при капании на сформировавшиеся колонии раствором Люголя.

Образование уреазы. Исследуемую культуру засевают на среду Христенсена. Посев делают в пробирки с косым столбиком штрихом. Инкубируют при температуре 30 - 32° С в течение 18 - 24 часов. При положительной реакции происходит покраснение среды.

Тесты протсолитической активности: а) разжижение желатина - исследуют путем посева изучаемой культуры уколом в столбики желатина строго по оси пробирки. Инкубируют в течение 18 - 24 часов при 30 - 32° С, затем пробирки помещают в холодильник на 20 минут одновременно с контрольной, незасеянной пробиркой. При положительном результате в засеянной пробирке желатин становится жидким, а в контрольной загустевает; б) гидролиз казеина - изучают путем точечного посева исследуемой культуры на казеиновый агар. Инкубируют в течение 18 - 24 часов при температуре 30 - 32° С. При положительной реакции вокруг выросших колоний образуется гидролиз казеина.

IV. Окраска кристаллов бактерий группы Bac. thuringiensis

 

Кроме перечисленных тестов для идентификации Bac. thuringiensis следует обязательно производить микроскопию мазков на наличие кристаллов и спор. Выявленные кристаллы будут единственным отличительным признаком от Bac. cercus. Для микроскопического исследования петлей снимают через 48 часов инкубации из типичных по морфологическим признакам колоний часть материала и помещают на предметное стекло в каплю 0,85% раствора хлористого натрия. Содержимое капли распределяют по стеклу на площади 1 см2, высушивают на воздухе и фиксируют над пламенем горелки. Полученный мазок окрашивают одним из перечисленных ниже способов:

а) метод Шеффера и Фултона. Фиксированный на пламени мазок окрашивают 5%-ным водным малахитовым зеленым при подогреве до появления паров. Затем препарат промывают водой и докрашивают 30 сек 0,5% карболовым эозином. Препарат рассматривают под микроскопом с иммерсионной системой. При данном методе окраски споры получаются зеленого цвета, а кристаллы - красного цвета;

б) метод Пешкова (модификация Моторной). Фиксированный мазок покрывают метиленовой синью Леффлера и в течение 3-х мин. держат над пламенем горелки до появления паров, затем смывают водопроводной водой и добавляют сафронии (пиронии) и держат в течение 1 мин. без огня, затем смывают водопроводной водой. Препарат рассматривают под микроскопом с иммерсионной системой. При данном методе окраски споры - голубые, а кристаллы - красного цвета;

в) метод люминесцентной микроскопии. Люминесцентная микроскопия благодаря высокой чувствительности значительно повышает эффективность диагностических исследований. Мазок культуры на предметном стекле, после высушивания, фиксируется 5 минут 5% карболовой кислотой. После промывания водой препарат флуорохромируется акридиновым оранжевым в течение 5 минут. Раствор красителя готовится на фосфатном буфере с pH - 5,29 в концентрации 1:50000. При просмотре препаратов в падающих сине-фиолетовых лучах люминесцентного микроскопа наблюдается ярко-красное свечение вегетативных бактериальных клеток, светло-желтое - кристаллов и зеленое - спор.

V. Серологическая диагностика бактерий группы
Bac. thuringiensis

 

Для серологической диагностики бактерий группы Bac. thuringiensis следует приготовить антифлагелярные имунные сыворотки. Кроликов инъецируют суспензией живых подвижных культур. В качестве продуцентов живых культур следует использовать те бактериальные препараты, которые применяются или будут применяться в сельском хозяйстве данной территории (республика, область и т. д.). Подвижность бактерий увеличивают серией пересевов на пептонной воде, а затем выращивают на полужидком 0,7% агаре (МПА) при 30° С в течение 12 - 18 часов. Непосредственно перед каждой инъекцией производят смыв агаровой культуры стерильным 0,85% раствором хлористого натрия. Доводят концентрацию микробных клеток до оптического стандарта, соответствующего 2 млрд/мл. Антигены живых бактерий вводят в ушную вену кроликов через каждые три дня по схеме: первое введение - 0,5 мл; второе введение - 1 мл; третье - 1 мл; четвертое - 2 мл; пятое - 2 мл. Кроликов через неделю после последней инъекции обескровливают. Сыворотки консервируют 0,5% раствором фенола. Реакция аглютинации проводят пробирочным способом. К 0,9 мл подвижной бульонной культуры, убитой формалином, прибавляют 0,1 мл сыворотки в разведениях 1:20; 1:40; 1:80; 1:160; 1:320; 1:640; 1:1280. После встряхивания пробирки выдерживают в термостате при 37° С в течение двух часов, затем в холодильнике в течение одного часа. Реакции оценивают по 4-х бальной системе - по степени просветления жидкости, образованию зонтика или пуговки на дне пробирки и по степени склеенности осадка. Положительной реакцией, обозначаемой ++++ считают полное просветление и образование осадка в виде зонтика, который при встряхивании образует склеенные комочки в прозрачной жидкости. Отрицательной реакцией (-) считают отсутствие просветления и осадок в виде пуговки.

 

Схема N 1

 

Дифференциация бактерий Bac. thuringiensis по схеме
(De Barjac H., Bonnefoi A., 1968)

 

                                             /--------------------------\

                                             |Эстераз-|Се-|Систематиче- |

                                             |ный тип |ро-|ское название|

                                             |        |тип|             |

                                             |--------+---+-------------|

                                  /Манноза\+ |berliner| 1 |thuringiensis|

                                  |Крахмал/++|        |   |             |

                           /Эску- |          |        |   |             |

                   /Саха-  |лин+++|Манноза\- |finiti- |   |finitimus    |

                   |роза  +|      \Крахмал/- |mue     | 2 |             |

                   |Пленка-|                 |        |   |             |

           /Проте- |Уреаза-|Эску- /Манноза\- |tol-    |   |tolworthi    |

      /Са- |олиз  +|       \лин  +\Крахмал/+ |worthi  | 9 |             |

      |ли- |Пиг-   |                         |        |   |             |

      |цин+\мент  -|Саха-  /Эску- /Манноза\- |galle-  |   |alzawae      |

      |            |роза  +|лин + \Крахмал/+ |riae    | 7 |             |

      |            |Пленка-|                 |        |   |             |

      |            |Уре-   |Эску- /Манноза\- |kenyae  |4a,|kenyae       |

      |            \аза  ++\лин +-\Крахмал/+-|        |4c |             |

 /    |                                      |        |   |             |

А|Ле- |                           /Сахаро-\  |        |   |             |

ц|ци- |                           |за     | +|        |   |             |

е|ти- |                           |Манноза| -|        |   |             |

т|на- |                           |Крахмал| +|sotto   |4a,|sotto        |

и|за +|    /Проте- /       /      |Целло- |  |        |4  |             |

л|    |    |олиз+++|Пленка-|Эску- |биоза  / -|        |   |             |

м|    |    |Пиг-   |Уреаза-|лин  +|          |        |   |             |

е|    |    |мент  -\       \      |Сахаро-\  |        |   |             |

т|    |    |                      |за     | -|        |   |             |

и|    |Са- |                      |Манноза| -|dendro- |4a,|dendrolimus  |

л|    |ли- |                      |Крахмал| +|limus   |4  |             |

к|    \цин-|                      |Целло- |  |        |   |             |

а|         |                      \биоза  / +|        |   |             |

р|         |                                 |        |   |             |

б|         |Проте- /       /      /Сахаро-\  |        |   |             |

и|         |олиз+++|Пленка-|Эску- |за     | -|alesti  | 3 |alesti       |

н|         |Пиг-   |Уреаза-|лин  +|Манноза| -|        |   |             |

о|         \мент  -\       \      \Крахмал/++|        |   |             |

л|                                           |        |   |             |

 |    /Са- /Проте- /Саха-  /      /          |        |   |             |

 |    |ли- |олиз  +|роза  -|Эску- |Манноза\- |galle-  |   |galleriae    |

 |    |цин+|Пиг-   |Пленка-|лин+++|Крахмал/++|riae    | 5 |             |

 |Ле- |    \мент  -\Уреаза+\      \          |        |   |             |

 |ци- |                                      |        |   |             |

 |ти- |    /Проте- /Саха-  /      /          |        |   |             |

 |на- |Са- |олиз  +|роза  +|Эску- |Манноза\- |morri-  |   |morrisoni    |

 \за -|ли- |Пиг-   |Пленка+|лин  +|Крахмал/+-|soni    | 8 |             |

      \цин-\мент  -\Уреаза+\      \          |        |   |             |

А                                            |        |   |             |

ц          /Проте- /Саха-  /      /          |        |   |             |

е/         |олиз  +|роза  +|Эску- |Манноза\+ |entomo- |   |subtoxicus   |

т|Ле- /    |Пиг-   |Пленка+|лин ++|Крахмал/+ |cidus   | 6 |             |

и|ци- |Са- |мент  -\Уреаза-\      \          |        |   |             |

л|ти- |ли- |                                 |        |   |             |

м|на- |цин-|Проте- /Саха-  /      /          |        |   |             |

е|за -\    |олиз  +|роза  +|Эску- |Манноза\+ |entomo- | 6 |entomocidus  |

т\         |Пиг-   |Пленка-|лин  +|Крахмал/+ |cidus   |   |             |

и          \мент  -\Уреаза-\      \          |        |   |             |

л                                            |        |   |             |

к                                            |        |   |             |

а                                            |        |   |             |

р                                            |        |   |             |

б                                            |        |   |             |

а                                            |        |   |             |

н                                            |        |   |             |

о                                            |        |   |             |

л                                            \--------------------------/

VI. Оценка полученных результатов

 

Полученные результаты следует оценивать с утвержденными нормативами ПДК бактериальных инсектицидов в воздухе рабочей зоны и в воде поверхностных водоемов (список N 12 предельно-допустимых концентраций вредных веществ в воздухе рабочей зоны, утвержденные МЗ СССР 22 декабря 1978 г. за N 1948; правила охраны поверхностных вод от загрязнения сточными водами, утвержденные МЗ СССР 16 мая 1974 г. за N 1166). Нормативы остаточных количеств бактериальных инсектицидов в остальных объектах окружающей среды (растительные продукты, воздух населенных мест и т.д.) разрабатываются и в нормативных документах появятся позднее.

 

Таблица 3

 

Дифференциальные свойства микроорганизмов Bac. thuringiensis
(De Barjaс H., Bonnefoi A., 1973)

 

Разновидно- сти Вac. thuringien- sis

Образо- вание

Кислота из

Ги- др- ол- из кр- ах- ма- ла

Пр- от- ео- лиз

Образование

Жгути- ковый анти- ген

ац- ет- ои- на

ле- ци- ти- на- зы

с а х а р о з ы

с а л и ц и н а

м а н н о з ы

ц е л л о б и о з ы

уре- азы

эс- ку- ли- тина

пиг- мен- та

пле- нки

эк- зо- ток- сина

thuringien- sis - 202 finitimis alesti kuretaki dendrolimus

+ + + + + + + + - - + + + + + + +

+ + + + + + + - - - + - + - + + +

H1 H2 H3a H3a.3b H4a.4b H4a.b H4a 4c H5 H6 H6 H7 H8 H9 H10 H10 H11 H12

+

+

-

+

-

+

-

+++

-

+

-

sotto kenyae galleriae - 69-6 antomocidus subtoxicus alzawae morrisoni tolworthi darmstadi- ensis caucasicus thompsoni toumanoffi

-

+

-

+

+/-

+

++

+/-

-

-

+/-

+ + -

- + -

- - -

+ + +

+- + +

+ + +

- - -

+ + 0 0 +++ 0

- - -

+ + - 0 - 0

+ + + 0 - +

+ -

- -

+ +

+ 0

+ +

+ +

+ +

- -

 

Примечание: -, +-, +, ++, +++ степени проявления свойства; +/культура проявляет и не проявляет данного свойства; 0 - исследователи этого свойства не упоминают.

VII. Рецепты питательных сред

 

Основой для приготовления плотных питательных сред, предназначенных для выделения Bac. thuringiensis, может служить любой 2,5% питательный hrap.

Мясо-пептонный агар. К 1 л мясо-пептонного бульона прибавляют 20 г агара, нагревают до полного растворения, устанавливают pH 7,2 - 7,4 осветляют, фильтруют в горячем виде и разливают во флаконы. Стерилизуют при 120° С в течение 30 минут. При использовании питательного агара заводского изготовления его готовят по прописи с добавлением мясо-пептонного бульона 0,5 л на 1 л среды.

Желточный агар. К 500 мл стерильного питательного агара, расплавленного и охлажденного до 45° С, прибавляют эмульцию 2-х яичных желтков (в 10 мл стерильного 0,85% раствора хлористого натрия). Смесь тщательно перемешивают и разливают в чашки Петри. Хранение в холодильнике 7 - 10 дней.

Среда Донован. К 500 мл питательного агара прибавляют 2,5 г трех замещенного нитрата натрия и 2,5 г хлористого лития. Агар стерелизуют при 120° С 20 минут. После охлаждения до 45° С добавляют эмульцию яичного желтка в стерильном 0,85% растворе хлористого натрия и 50 ед/мл полимиксина. Смесь тщательно перемешивают и разливают в чашки Петри. Хранение в холодильнике 7 - 10 дней.

Среда Мосселя (модификация авторов)*(1). К 500 мл питательного агара добавляют 5 г маннита, 12,5 мг фенолового красного. Стерилизуют в автоклаве при 110° С 30 минут. После охлаждения до 45° С добавляют эмульцию яичного желтка в 0,85% растворе хлористого натрия и 50 ед/мл полимиксина. Смесь тщательно размешивают и разливают в чашки Петри. Хранение в холодильнике 7 - 10 дней.

Среда Пивоварова с ТТХ (модификация авторов)*(2). К 500 мл стерильного питательного агара с 0,5% содержанием поваренной соли, расплавленного и затем охлажденного до 45° С, прибавляют эмульцию яичного желтка в 0,85% растворе хлористого натрия, 50 ед/мл полимиксина и 0,005% ТТХ (трифенилтетразолия хлористого). Смесь тщательно перемешивают и разливают в чашки Петри. Хранение в холодильнике 7 - 10 дней.

Казеин-полимиксиновый агар с феноловым красным (разработка авторов). *(3) К 500 мл голодного агара добавляют 5 г маннита, 12,5 мг фенолового красного. Стерилизуют при 110° С в течение 30 минут. После охлаждения до 45° С добавляют 150 мл стерильного обезжиренного молока и 50 ед/мл полимиксина. Смесь тщательно перемешивают и разливают в чашки Петри. Хранение в холодильнике 7 - 10 дней.

Казеин-полимиксиновый агар (разработка авторов)*(4). К 500 мл стерильного голодного агара, расплавленного и затем охлажденного до 45° С прибавляют 150 мл стерильного обезжиренного молока и 50 ед/мл полимиксина. Смесь тщательно перемешивают и разливают в чашки Петри. Хранение в холодильнике 7 - 10 дней.

Казеин-полимиксиновый агар с ТТХ (разработка авторов). К 500 мл стерильного голодного агара, расплавленного и охлажденного до 45° С прибавляют 150 мл стерильного обезжиренного молока, 0,005% ТТХ и 50 ед/мл полимиксина. Смесь тщательно перемешивают и разливают в чашки Петри. Хранение в холодильнике 7 - 10 дней.

Эскулиновый агар (модификация авторов)*(5). К 500 мл питательного агара прибавляют 0,5 г эскулина и 0,5 лимонно-кислого железа. Стерелизуют при 110° С 30 минут. Среду разливают в чашки Петри. Хранение в холодильнике 7 - 10 дней.

Казеиновый агар. К 500 мл стерильного голодного агара прибавляют 150 мл стерильного обезжиренного молока. Смесь тщательно перемешивают и разливают в чашки Петри. Хранение в холодильнике 7 - 10 дней.

Агар с крахмалом. К 500 мл стерильного питательного расплавленного агара прибавляют 150 мл 1% стерильного растворимого раствора крахмала. Смесь перемешивают и разливают в чашки Петри. Хранение 7 - 10 дней.

Среда Христенсена. На 100 мл воды прибавляют пентона - 0,1 г, хлористого натрия - 0,5 г, глюкозы - 0,1 г, однозамещенного фосфата калия - 0,2 г, 0,2% водного раствора фенолрота - 0,6 мл, агара - 2,0 г, мочевины - 2,0 г. Среда стерилизуется при 110° С 30 минут. Среду скашивают в пробирках, хранение 7 - 10 дней.

Глюкозо-фосфатный бульон Кларка. К 100 мл дистиллированной воды добавляют пентона - 0,5 г, глюкозы - 0,5 г, К2HPO4 - 0,5 г, хлористого натрия - 0,5 г. Смесь стерилизуют при 110° С в течение 30 минут. Разливают в стерильные пробирки.

Среда Гисса. К пентонной воде прибавляют 0,5 - 1,0% одного из углеводов, глюкозидов или многоатомных спиртов. Устанавливают pH 7,0 - 7,2 и добавляют индикатор Андреде. Затем разливают по стерильным пробиркам и стерилизуют при 110 °С в течение 30 минут.

-------------------------------------------------------------------------