Приложение 6.5.3. Оценка кожной сенсибилизации по реакции региональных лимфоузлов путем измерения содержания АТФ (метод LLNA : DA)

Приложение 6.5.3

Оценка кожной сенсибилизации по реакции региональных лимфоузлов путем измерения содержания АТФ (метод LLNA : DA)

Идентичен международному документу OECD N 442A "Skin Sensitization: Local Lymph Node Assay: DA" (ОЭСР Руководство N 442A "Оценка кожной сенсибилизации по реакции региональных лимфоузлов путем измерения содержания АТФ (метод LLNA : DA)"). Принят 22 июля 2010 года. Перевод с английского языка (еn). Степень соответствия - модифицированный (MOD).

1. Область применения

1.1. Настоящий метод исследования обеспечивает получение информации о способности исследуемого вещества вызывать кожную сенсибилизацию в тесте in vivo на мышах путем люминесцентного анализа содержания аденозинтрифосфата (АТФ) в клетках региональных лимфоузлов, отражающего скорость их пролиферации. Полученная информация может быть использована для классифицикации веществ в соответствии с Согласованной на глобальном уровне системой классификации и маркировки (СГС) по данному виду токсичности.

1.2. До проведения эксперимента должна быть рассмотрена вся доступная информация об исследуемом веществе. Такая информация включает данные о составе и химическом строении вещества; его физико-химические свойства; результаты токсикологических испытаний in vivo и in vitro; токсикологические данные по структурно родственным веществам и предполагаемые пути использования вещества. Эта информация является необходимой для подтверждения того, что испытание является важным для защиты здоровья человека и способствует обоснованному выбору начальной дозы.

2. Общие положения

2.1. Руководство ОЭСР по тестированию химических веществ периодически пересматриваются в свете научно-технического прогресса, изменяющихся потребностей в нормативах и соображений заботы о благополучии животных. Первый вариант Руководства по оценке кожной сенсибилизации у мышей путем изучения реакции региональных лимфоузлов (the Local Lymph Node Assay, LLNA) был принят в 2002 году и позднее пересмотрен. Детали валидации LLNA и обзор связанных с этой темой работ опубликованы. В исходном варианте метода LLNA для измерения скорости пролиферации лимфоцитов используются радиоизотопы тимидина или йода и, следовательно, применение данного метода имеет ограничения из-за наличия регионов, в которых приобретение, использование или утилизация радиоизотопов проблематичны.

Метод LLNA: DA, разработанный сотрудниками Daicel Chemical Industries, Ltd., является модификацией метода LLNA, позволяющей отказаться от использования радиоизотопов и заключающейся в биолюминесцентном определении содержания аденозинтрифосфата (АТФ) как индикатора пролиферации лимфоцитов. Он был утвержден, пересмотрен и рекомендован международной группой экспертной оценки как адекватный метод отнесения химических соединений к сенсибилизирующим или несенсибилизирующим веществам с определенными ограничениями.

2.2. Методы LLNA (МР N 429), две его нерадиоактивные модификации - LLNA: DA (OECD TG 442 A) and LLNA: BrdU-ELISA (OECD TG 442 В) и тест in vivo на морских свинках (МР N 406) являются равнозначными и могут быть использованы как альтернативные, в которых положительные и отрицательные результаты, как правило, не требуют дальнейшего подтверждения. До проведения исследования испытательная лаборатория должна изучить все имеющиеся сведения об испытуемых веществах - информацию о химической структуре исследуемого вещества, его физико-химических свойствах, а также результаты любых других тестов на токсичность исследуемого вещества in vitro или in vivo, включая токсикологические данные по структурно близким веществам. На основании этой информации принимается решение о том, подходит ли метод LLNA : DA для тестирования данного вещества.

2.3. Метод LLNA : DA имеет следующие ограничения:

- не подходит для тестирования веществ, влияющих на содержание в лимфоцитах АТФ (например, ингибиторов образования АТФ) или влияющих на точность измерения уровня АТФ (например, путем влияния на активность ферментов, утилизирующих АТФ, или влияния на внеклеточное содержание АТФ в ткани лимфоузла);

- некоторые химические вещества могут вызывать побочные эффекты, искажающие результаты LLNA : DA;

- некоторые металлы дают в LLNA ложноотрицательные эффекты, а некоторые кожные ирританты - например, некоторые разновидности сурфактантов - ложноположительные;

- следует учесть возможность преувеличения реальной опасности веществ при получении методом LLNA : DA пограничных эффектов со значениями индекса стимуляции (ИС) между 1,8 и 2,5, при установленном пороговом значении ИС 1,8 (пп. 5.2-5.3). В частности, по результатам тестирования 44 веществ (п. 5.1) метод LLNA : DA правильно идентифицировал 32 сенсибилизирующих вещества, но неправильно идентифицировал три из 12 несенсибилизирующих веществ, давая при этом пограничные значения ИС, лежащие между 1,8 и 2,5.

Во всех этих случаях следует использовать постановку другой разновидности теста LLNA (МР 429, МР 442 В) или классического теста на морских свинках (МР 406).

3. Принцип метода

3.1. Основной принцип, лежащий в основе LLNA : DA, заключается в том, что вещества-сенсибилизаторы обладают способностью ускорять пролиферацию лимфоцитов в тех лимфатических узлах, которые дренируют место нанесения исследуемого вещества. Скорость пролиферации лимфоцитов при этом пропорциональна дозе и мощности нанесенного на кожу аллергена. Отношение среднего значения скорости пролиферации лимфоцитов в экспериментальной группе животных к среднему значению скорости их пролиферации в контрольной группе (КГ), подвергнутой воздействию растворителя, называют индексом стимуляции (ИС). Пороговым значением ИС в методе LLNA : DA, позволяющим отнести тестируемое вещество к классу потенциальных кожных сенсибилизаторов, является значение 1,8.

3.2. Биолюминесцентный метод измерения количества пролиферирующих клеток в околоушных лимфоузлах, дренирующих участок нанесения тестируемого препарата, основан на использовании фермента люциферазы, катализирующего образование квантов видимого света из АТФ и люциферина [18, 19] согласно следующей реакции:

Интенсивность испускаемого света имеет линейную связь с содержанием в пробе АТФ и измеряется с помощью люминометра. Люциферин-люциферазный анализ является чувствительным методом измерения содержания АТФ и используется широким кругом прикладных аналитических методов [20].

4. Описание метода

4.1. Подготовка к опыту

Выбор вида животных

4.1.1. Для проведения данного теста используются молодые половозрелые самки мышей в возрасте от 8 до 12 недель - предпочтительно линии СВАJ, использовавшейся при валидации метода LLNA : DA. Различия в весе животных не должны превышать 20% от их среднего веса. Для использования мышей других линий и противоположного пола необходимо предварительно показать на стандартных эталонных веществах равноценность данной замены.

Условия содержания и кормления животных

4.1.2. Температура в помещении для животных должна составлять ; оптимальный диапазон влажности - 50-60%. Освещение должно быть искусственным, с чередованием 12-часовых периодов света и темноты. Для кормления животных могут использоваться обычные лабораторные диеты с неограниченным доступом к питьевой воды.

Подготовка животных

4.1.3. Животных отбирают случайным образом, маркируют для индивидуальной идентификации (любым способом, не затрагивающим область ушей), и содержат в клетках в течение по крайней мере пяти дней до начала введения тестируемого вещества, чтобы обеспечить их акклиматизацию к лабораторным условиям. До начала воздействия всех животных осматривают на предмет отсутствия видимых кожных повреждений.

Подготовка растворов тестируемого вещества

4.1.4. Твердые исследуемые вещества перед нанесением на уши мышей следует растворить или суспендировать в подходящих растворителях. Жидкие исследуемые вещества можно наносить неразбавленными; их разбавление растворителем производится только для получения рабочих растворов нужных концентраций. При изучении безопасности изделий медицинского назначения используют экстракты, полученные длительным выдерживанием изделий в подходящем растворителе. Растворы исследуемых препаратов следует готовить ежедневно - кроме тех случаев, когда заведомо известно, что они могут храниться в определенных условиях в течение определенного времени.

Контроль качества

4.1.5. В качестве положительного контроля (ПК) используются вещества с хорошо известной способностью к кожной сенсибилизации. Рекомендуется включать ПК в каждый проводимый эксперимент, поскольку это позволяет оценивать внутри- и межлабораторную воспроизводимость результатов данного теста, а также дает возможность избежать проведения дополнительного тестирования при возникновении каких-либо проблем (п. 4.1.6). Дозу ПК следует выбирать так, чтобы она не вызывала чрезмерной реакции воспаления кожи ушей или реакций системной токсичности. Положительный эффект ПК должен быть воспроизводимым, но не избыточным (ИС должен быть не больше 10). Предпочтительными веществами для использования в качестве ПК в тесте LLNA : DA являются 25%-е растворы гексил-коричного альдегида (CAS N 101-86-0) или евгенола (CAS N 97-53-0) в смеси ацетона с оливковым маслом (4:1, v/v).

4.1.6. Возможны ситуации, в которых реакция животных на ПК проверяется время от времени (например, не реже одного раза в полгода), в частности, для лабораторий, использующих метод LLNA : DA регулярно и имеющих достаточную архивную базу экспериментальных данных, демонстрирующую способность лаборатории получать воспроизводимые результаты (в базе должны быть результаты как минимум 10 отдельных опытов с использованием ПК, проводившихся не реже чем один раз в год).

4.1.7. Однако исследователи должны понимать, что решение применять ПК на периодической основе вместо постоянного параллельного использования сказывается на уверенности в том, что новые вещества, тестировавшиеся в промежутке между опытами с включением ПК и давшие в них отрицательный результат, действительно не обладают способностью к кожной сенсибилизации. В частности, если при периодическом использовании ПК вдруг обнаружится сбой системы в виде ложноотрицательного эффекта в группе животных ПК, под сомнением окажутся не только результаты данного эксперимента, но и результаты всех остальных, проведенных в промежутке между данным экспериментом и последним из тех, в которых ПК давал ожидаемый положительный эффект.

4.1.8. Всегда следует включать параллельно группу ПК, если возникают какие-либо изменения в процедуре проведения LLNA : DA (например, замена обученного персонала, смена поставщиков материалов, реагентов и лабораторных животных, замена используемого оборудования).

4.1.9. Если ПК и тестируемое вещество наносятся в разных растворителях, следует включить в опыт контроли на оба растворителя.

4.1.10. В случаях, когда оцениваются исследуемые вещества определенного химического класса или диапазона ответных реакций, можно использовать в качестве ПК "реперные" вещества того же класса с известной активностью в LLNA : DA.

4.2. Процедура исследования

Количество животных и выбор доз

4.2.1. В каждую экспериментальную группу включают, как минимум, 4 животных, всего тестируют, как минимум, 3 концентрации исследуемого вещества плюс параллельные группы негативного контроля (НК) для растворителей исследуемого вещества и положительного контроля (ПК). Уход и все манипуляции с животными в контрольных группах должны быть идентичны тем, которые используются для экспериментальных групп, за исключением введения самого тестируемого вещества.

4.2.2. Выбор доз тестируемого вещества и выбор растворителя должны быть обоснованы. Последовательные дозы обычно выбираются из подходящего ряда концентраций, например 100, 50, 25, 10, 5, 2,5, 1, 0,5% и т.д. Следует предварительно изучить всю доступную информацию по токсичности данного вещества (например, острой токсичности и способности вызывать раздражение кожи), его структуре и физико-химическим свойствам, а также аналогичные характеристики близких по структуре веществ; на основании анализа этих данных выбирают три концентрации так, чтобы самая высокая концентрация вызывала как можно более выраженный эффект, но при этом не обладала системной токсичностью и/или не вызывала чрезмерного раздражения кожи на месте нанесения. При отсутствии такой информации может возникнуть необходимость в проведении предварительного пробного опыта (пп. 4.2.5-4.2.8).

4.2.3. Растворитель не должен искажать результаты исследования или косвенно влиять на них; следует выбирать растворитель по критериям максимальной растворимости в нем тестируемого вещества, но можно использовать и суспензии. Рекомендованы следующие растворители: смесь ацетона с оливковым маслом (4:1, v/v), N,N-диметилформамид, метилэтилкетон, пропиленгликоль и диметилсульфоксид. Особое внимание следует уделить тому, чтобы водорастворимые вещества наносились на кожу в растворителе, хорошо смачивающем кожные покровы и тем самым не позволяющем тестируемому раствору быстро скатываться с поверхности кожи; для этого в растворы включают подходящие сурфактанты (например, 1% ПАВ L92).

4.2.4. Преимуществом данного метода является возможность проведения внутреннего контроля, для чего сравнивают состояние лимфоузлов одной и той же мыши на стороне нанесения препарата и на противоположной стороне; это позволяет оценить вариабельность эффекта у отдельных животных (п. 5.4). Анализ внутригрупповой вариабельности индивидуальных данных дает основания для объективной оценки возможности сокращения числа мышей в группе ПК. В некоторых странах органы надзора требуют предоставления индивидуальных данных по отдельным животным, а в других странах принимаются и усредненные данные по каждой экспериментальной группе.

Предварительные исследования

4.2.5. В отсутствии информации, позволяющей рассчитать максимальную дозу тестируемого вещества (п. 4.2.2), следует провести предварительное исследование для выявления подходящего диапазона доз. Цель предварительного исследования состоит в получении информации о системном (п. 4.2.8) и кожно-раздражающем (п. 4.2.7) эффектах изучаемого препарата.

4.2.6. Предварительное исследование проводится при условиях, идентичных условиям основного исследования LLNA : DA, но оценка скорости пролиферации клеток лимфоузлов не проводится и количество животных в группе может быть меньшим. Рекомендуется использовать группы по одному или по два животных на каждую дозу. Массу тела регистрируют перед началом эксперимента и перед его завершением (День 8). Мышей ежедневно осматривают на предмет выявления любых клинических проявлений системной токсичности или местного раздражения на участке аппликации вещества, оценивая наличие эритемы в баллах с помощью таблицы. Замеры толщины уха получают, используя калиброметр (например, электронный микрометр или стрелочный калиброметр Пикока), в День 1 (перед нанесением вещества), День 3 (спустя приблизительно 48 часов после первой дозы), День 7 (за 24 часа до окончания опыта) и День 8. Кроме того, в День 8 толщину ушей можно дополнительно оценить путем взвешивания стандартного по площади образца ткани ушной раковины, полученного с помощью перфоратора после гуманного умерщвления животных. Раздражение кожи на месте аппликации вещества оценивается как чрезмерное при наличии эритемы с выраженностью в 3 и более баллов по шкале таблицы и/или при увеличении толщины уха на 25% и более по сравнению с первоначальной в любой день осмотра животных. В качестве максимальной дозы для основного исследования LLNA : DA выбирают максимальную из тех доз предварительного исследования (п. 4.2.2), которые не вызывали признаков системной токсичности и/или чрезмерного местного раздражения кожи.

Таблица

Шкала оценки эритемной реакции

Наблюдение	Баллы
Нет эритемы	0
Очень слабая эритема (едва заметная)	1
Четко выраженная эритема	2
Эритема от умеренной до тяжелой	3
От тяжелой эритемы (свекольный цвет кожи) до образования язв, покрытых струпом, мешающим проводить классификацию эритемы	4

4.2.7. В дополнение к увеличению толщины уха на 25% и более по сравнению с первоначальной, для идентификации веществ-ирритантов в LLNA: DA также используется статистически значимое увеличение среднего значения толщины уха в группе экспериментальных мышей по сравнению с аналогичной величиной в группе контрольных мышей. Однако, если различия этих величин статистически достоверны, но составляют менее 25%, они не могут быть квалифицированы как свидетельство избыточного раздражения ткани уха данной дозой тестируемого вещества.

4.2.8. Следующие клинические наблюдения могут свидетельствовать о наличии системной токсичности тестируемых веществ при их использовании в предварительной постановке метода LLNA : DA: изменения в функции нервной системы (взъерошивание шерсти, атаксия, тремор, конвульсии); в поведении (агрессивность, изменения в уровне активности и в груминговой активности); в частоте и интенсивности дыхания (затрудненное дыхание, одышка, хрипы) и в потреблении пищи и воды. Кроме того, следует регистрировать: признаки летаргии и/или апатии; любые клинические признаки, которые проявлялись как более чем эпизоды незначительной или мгновенной боли и дистресса; снижение массы тела более чем на 5% за период от Дня 1 до Дня 8; гибель животных. Умирающие животные или животные, очевидно страдающие от боли или показывающие признаки серьезного и устойчивого дистресса, должны гуманно умерщвляться.

План основного эксперимента

4.2.9. План Эксперимента следующий:

День 1

Определение и регистрация веса каждого животного и их визуальный осмотр. Проводят аппликацию 1%-го раствора лаурилсульфата натрия (ЛС) на тыльную сторону каждого уха подопытных мышей, погружая в раствор ЛС кисточку и проводя ею по тыльной стороне уха 4-5 раз, чтобы покрыть раствором всю поверхность. Через час на тыльную сторону каждого уха наносят по 25 мкл растворов исследуемого вещества в соответствующих разведениях, одного растворителя или ПК (если он проводится параллельно в каждом эксперименте; в противном случае берут данные последнего опыта с использованием ПК, в соответствии с пп. 4.1.5-4.1.9).

Дни 2, 3 и 7

Повторить процедуру аппликации 1%-го раствора ЛС и тестируемого вещества, выполненную в День 1.

Дни 4, 5 и 6

Аппликаций не проводят.

День 8

Регистрируют вес каждого животного и результаты его визуального осмотра. Через 24-30 часов после последней аппликации тестируемого вещества в День 7 производят гуманное умерщвление животных. Извлекают дренирующие околоушные лимфоузлы и помещают их в забуференный физиологический раствор (PBS) от каждого животного отдельно. Детали процедуры идентификации лимфоузлов и их препарирования приведены в работе. В протокол исследования могут быть также включены дополнительные параметры контроля местных изменений кожи уха на месте аппликации - проявления эритемы уха или данные по толщине ушей, полученные с помощью калибратора или определения веса стандартных кусочков уха при некропсии.

Подготовка суспензии клеток

4.2.10. Суспензию отдельных клеток лимфоузлов (КЛУ) получают путем помещения лимфоузлов между двумя предметными стеклами с последующим легким сдавливанием стекол (метод сандвича). После того как ткань лимфоузла распределится между стеклами тонким слоем, стекла разъединяют. Клетки разрушенных лимфоузлов смывают с каждого стекла, располагая их под углом над чашкой Петри и промывая раствором PBS с одновременным соскабливанием биоматериала с поверхности стекла с помощью скребка для клеточных культур. На оба стекла расходуют 1 мл PBS. Слегка гомогенизируют материал в чашке Петри с помощью скребка. Отбирают микропипеткой 20 мкл суспензии КЛУ, стараясь не захватывать видимых глазом обрывков капсулы лимфоузла, и смешивают с 1,98 мл PBS с получением образца объемом 2 мл. На одну мышь, таким образом, получается по 2 образца объемом 2 мл каждый.

Особую осторожность следует проявлять при работе с лимфоузлами от контрольных животных, так как из-за их малого размера возможно проявление различных артефактов при определении величины ИС.

Определение клеточной пролиферации (измерение содержания АТФ в лимфоцитах)

4.2.11. Увеличение содержания АТФ в лимфоузлах подопытных животных определяют с помощью коммерческих тест-наборов для определения АТФ, основанных на люциферин-люциферазной реакции с оценкой уровня биолюминесценции в относительных единицах люминесценции (ОЕЛ). Время между забоем животного и измерением содержания АТФ в биопробах должно быть одинаковым и не более 30 минут, поскольку содержание АТФ в КЛУ быстро падает во времени [12]. Поэтому следует разработать протокол исследования таким образом, чтобы для каждого животного между забоем и измерением содержания АТФ в КЛУ проходило около 20 минут. Для каждой мыши измеряют 2 образца и вычисляют среднегрупповые значения содержания АТФ в КЛУ (п. 5.2).

Клинические наблюдения

4.2.12. Каждую мышь следует тщательно осматривать, по крайней мере, раз в день для выявления любых клинических признаков как местного раздражения на участке аппликации вещества, так и системной токсичности. Все наблюдения должны регистрироваться и включать записи наблюдений за каждой мышью по отдельности. Мышей с выявленными симптомами системной токсичности или чрезмерного местного раздражения/изъязвления кожи подвергают эвтаназии [36].

Масса тела

4.2.13. Как отмечено в п. 4.2.9, следует измерять индивидуальные массы тела животных в начале эксперимента и перед запланированным гуманным умерщвлением.

5. Анализ и интерпретация данных

Обработка результатов

5.1. Результаты опыта должны быть представлены в виде средних значений индекса стимуляции (ИС) для каждой экспериментальной группы. Величину ИС получают путем деления среднего значения ОЕЛ в каждой экспериментальной группе, включая группу ПК, на среднее значение ОЕЛ в контрольной группе, обрабатывавшейся растворителем. Таким образом, ИС для контрольной группы мышей равен 1.

5.2. Результат тестирования оценивают как положительный при значении . В случае пограничных значений ИС (например, между 1,8 и 2,5) для трактовки результатов можно также учитывать выраженность зависимости доза-ответ, статистическую значимость и непротиворечивость эффектов в группах положительного (ПК) и отрицательного (НК) контролей.

5.3. Если имеется необходимость уточнить полученные пограничные данные (ИС между 1,8 и 2,5), можно рассмотреть дополнительную информацию из опубликованных данных других авторов - характер зависимостей доза-эффект, проявления системной токсичности или избыточного раздражения при накожной аппликации и, если это возможно, среднегрупповые значения ИС и достоверности различий с контрольной группой. Следует проанализировать также литературные данные по различным свойствам тестируемого вещества, включая наличие у него структурного сходства с известными кожными сенсибилизаторами, вызывает ли оно чрезмерное местное раздражение кожи у мышей и какой характер имеет зависимость доза-ответ.

5.4. При статистическом анализе данных можно использовать статистические тесты на наличие связи между переменными доза и ответ, а также подходящие методы сравнения межгрупповых различий, например, метод линейной регрессии или тест Уильямса для оценки тренда доза-ответ и тест Даннетта для попарных сравнений внутригрупповых значений ИС. При выборе метода оценки достоверности межгрупповых различий ИС исследователь должен учесть возможное неравенство дисперсий изучаемой переменной внутри сравниваемых групп, что может потребовать выбора методов непараметрического анализа. При наличии "выбросов" индивидуальных значений ИС, далеко отстоящих от значений данной величины у других мышей той же группы, приходится проводить статистический анализ дважды - с выпадающими точками и без них.

Данные

5.5. Данные должны быть представлены в форме таблицы. При использовании индивидуального подхода к животным следует привести индивидуальные значения ОЕЛ для каждого животного, средние значения ОЕЛ в каждой группе мышей с соответствующим значением вариабельности (например, стандартного отклонения или среднеквадратической ошибки) и средние величины ИС для каждой опытной группы по отношению к группе негативного контроля. При использовании объединенного подхода к сбору экспериментального материала следует привести полученные средние значения или медианы величин ОЕЛ и СИ для каждой опытной группы по отношению к группе контроля растворителя.

6. Подготовка отчета

Отчет о проведении должен содержать следующую информацию.

Тестируемое вещество и контрольные эталонные вещества:

- данные идентификации (например, номер CAS, если имеется; источник; степень чистоты; известные примеси; номер партии);

- физические и физико-химические свойства (такие, как летучесть, стабильность, растворимость);

- если это сложная смесь, то указать состав и относительные проценты компонентов.

Растворитель/носитель:

- данные идентификации (степень чистоты; концентрация, если использовалась смесь нескольких растворителей; используемый объем);

- обоснование выбора растворителя.

Проверка животных:

- источник поступления мышей линии СВА;

- микробиологический статус животных, если это известно;

- количество и возраст животных;

- источник поступления животных, условия содержания, диета и т.д.

Условия эксперимента:

- производитель, номер партии и данные производителя по гарантиям и контролю качества тест-наборов для определения АТФ;

- детали подготовки и нанесения тестируемого вещества;

- обоснование выбора дозы (включая результаты предварительных экспериментов, если проводились);

- концентрации тестируемого вещества и растворителя и общее количество вводимого тестируемого вещества;

- детали качества пищи и воды (включая тип/источник диеты, источник поступления питьевой воды);

- детали схемы проведения эксперимента и получения биологического материала;

- методы оценки токсичности;

- критерии интерпретации результатов исследования как положительных или отрицательных;

- детали любых отклонений от стандартного протокола с объяснением того, как данное отклонение повлияло на схему исследования и результаты.

Контроль качества:

- резюме результатов последнего из проводившихся опытов с контролем качества, включая информацию относительно тестируемого вещества, использовавшихся концентраций и растворителя;

- параллельный и/или исторический ПК и параллельные данные НК на влияние растворителя/связующего вещества для данной лаборатории;

- если параллельный ПК не был включен в данный опыт, наличие данных и лабораторных протоколов для последнего из периодических ПК и протоколов, детализирующих данные исторического ПК, который служит для данной лаборатории обоснованием для отказа от осуществления параллельного ПК.

Результаты:

- индивидуальные значения веса мышей перед началом опыта и перед плановым забоем, а также средние значения и соответствующие ошибки этих величин (например, стандартное отклонение или среднеквадратическая ошибка среднего значения) для каждой экспериментальной группы;

- динамика начала проявления и симптомов токсичности, включая признаки кожного раздражения на участке аппликации вещества, если таковые имеются, для каждого животного по отдельности;

- время забоя и время измерения содержания АТФ в клетках лимфоузлов для каждого животного по отдельности;

- таблица значений ОЕЛ и СИ для каждой мыши каждой экспериментальной группы;

- среднее значение и соответствующая ошибка (например, стандартное отклонение или среднеквадратическая ошибка среднего значения) величины ОЕЛ для каждой экспериментальной группы и результаты анализа резко отклоняющихся значений внутри каждой экспериментальной группы;

- вычисленное значение СИ и надлежащей меры его вариабельности, учитывающей вариабельность эффектов как в экспериментальных группах, так и в группах контроля;

- характер зависимости доза-ответ;

- статистический анализ этой зависимости, при необходимости.

Обсуждение результатов:

- краткий комментарий к полученным результатам, включая характер зависимости доза-эффект, и, при необходимости, ее статистический анализ, с заключением относительно того, следует ли тестируемое вещество считать кожным сенсибилизатором.

Заключение.